Psoralidin

别名: 补骨脂定; 补骨脂次素; 补骨脂酮
目录号: V8420 纯度: ≥98%
Psoralidin 是 COX-2 和 5-LOX 的双重(双功能)抑制剂。
Psoralidin CAS号: 18642-23-4
产品类别: New12
产品仅用于科学研究,不针对患者销售
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产品描述
补骨脂素是一种COX-2和5-LOX的双重(双功能)抑制剂。它具有抗癌、抗菌和抗炎作用。补骨脂素显著下调NOTCH1信号通路。补骨脂素还能强烈诱导活性氧(ROS)的产生。
生物活性&实验参考方法
靶点
Psoralidin inhibits NOTCH1 signaling, leading to downregulation of NOTCH1 and its downstream target HES1 [2].

It also inhibits NF-κB (p65) expression [2].
体外研究 (In Vitro)
补骨脂素处理(10、15、20 和 25 μM;24 小时)对清晰的乳腺癌细胞 (BCC) 群体(ALDH⁻ 细胞、ALDH⁺ 细胞和商业乳腺癌干细胞)均敏感,IC₅₀ 值范围为 18 至 21 μM。另一方面,用补骨脂素(30 μM;24 小时)处理的 MCF-12A 细胞能够显著诱导 ALDH⁻ 细胞、ALDH⁺ 细胞和商业乳腺癌干细胞[2]。补骨脂素对 AIDS 中 ALDH⁻ 和 ALDH⁺ 细胞的治疗作用[2]:补骨脂素抑制 ALDH⁻ 乳腺癌细胞、ALDH⁺ 乳腺癌干细胞和商业乳腺癌干细胞的细胞活力,24 小时处理后的 IC₅₀ 值范围为 18 至 21 μM。正常乳腺上皮细胞(MCF-12A)对补骨脂素具有耐药性[2]。

当补骨脂素以各自的IC₅₀浓度处理时,可显著抑制ALDH⁻和ALDH⁺细胞的集落形成[2]。

补骨脂素抑制ALDH⁻和ALDH⁺细胞的乳腺球形成,减少乳腺球的数量和大小[2]。

在30 μM浓度下,补骨脂素可诱导ALDH⁻细胞、ALDH⁺细胞和商业乳腺癌干细胞凋亡,凋亡率分别为53.60%、44.1%和45.9%[2]。

补骨脂素下调ALDH⁻和ALDH⁺细胞中NOTCH1和HES1蛋白的表达[2]。

补骨脂素增加E-钙黏蛋白的表达。它能抑制ALDH⁻和ALDH⁺细胞中β-catenin和波形蛋白的表达[2]。

在伤口愈合实验中,它能抑制细胞迁移:与载体处理的对照组相比,ALDH⁻细胞的迁移率为29.4%,ALDH⁺细胞的迁移率为19.77%,商业乳腺癌干细胞的迁移率为82%[2]。

在Transwell侵袭实验中,它能抑制细胞侵袭:与载体处理的对照组相比,ALDH⁻细胞的侵袭能力降低了0.65倍,ALDH⁺细胞的侵袭能力降低了0.30倍,商业乳腺癌干细胞的侵袭能力降低了0.46倍[2]。

在ALDH⁻和ALDH⁺细胞中,它能抑制NF-κB (p65)和BCL-2的表达,并诱导BAX的表达[2]。

它能诱导cleaved caspase-3的表达,在ALDH⁻和ALDH⁺细胞中,caspase-9和PARP均被切割[2]。
体内研究 (In Vivo)
补骨脂素(5 mg/kg)通过调节炎症反应中关键的促炎细胞因子的表达,减轻BALB/c小鼠经红外线照射后的肺部炎症[1]。
补骨脂素(5 mg/kg,腹腔注射)在BALB/c小鼠胸部照射(20 Gy)前30分钟和照射后1小时给药,可抑制照射后12小时和1周肺组织中TNF-α、TGF-β、IL-6、IL-1α、IL-1β和ICAM-1的mRNA表达[1]。

体内pull-down实验证实补骨脂素可直接与红外线照射小鼠肺提取物中的FLAP结合[1]。
酶活实验
重组人FLAP蛋白在大肠杆菌中表达,并带有C端6His标签,经Ni-NTA亲和层析、离子交换和凝胶过滤纯化。采用等温滴定量热法(ITC)在25℃下测定FLAP与补骨脂素的直接相互作用。在含有150 mM NaCl的Tris缓冲液(20 mM,pH 7.5)中,用0.1 mM补骨脂素滴定0.01 mM FLAP。每次滴定包括29次10 μL的进样,每次进样间隔300秒。数据拟合到单一位点结合模型。测得结合亲和力(Kd)为21.0 μM,ΔH = -18.5 ± 1.5 kcal/mol,ΔS = -26.5 cal/mol/°,化学计量比为1:1。在相同的等温滴定量热法(ITC)条件下,补骨脂素不与 5-脂氧合酶(5-LOX)或环氧合酶-2(COX-2)结合[1]。

对于下拉实验,通过将补骨脂素偶联到琼脂糖4B上制备补骨脂素-琼脂糖4B珠。将来自辐照细胞的细胞裂解液(500 μg)或纯化的FLAP(10 μg)与补骨脂素-琼脂糖珠在4°C下孵育过夜。洗涤后,通过免疫印迹分析结合的蛋白质[1]。
细胞实验
细胞活力测定[2]
细胞类型:ALDH-细胞、ALDH+细胞、商业乳腺癌干细胞(BCSC)和正常乳腺上皮细胞(MCF-12A)
测试浓度:10、15、50和25 μM
孵育时间:24小时
实验结果:ALDH-细胞、ALDH+细胞和商业BCSC的IC50为18至21 μM。

细胞凋亡分析[2]
细胞类型:ALDH-细胞、ALDH+细胞和商业化BCSC
测试浓度:20和30 μM
孵育时间:24小时
实验结果:20 μM处理诱导细胞死亡后,三种细胞类型均未观察到明显的细胞凋亡。然而,在30 μM处理下,ALDH-细胞、ALDH+细胞和商业化BCSC的凋亡率分别为53.60%、44.1%和45.9%。
采用台盼蓝排除法或MTT法检测细胞活力。细胞用不同浓度的补骨脂素(10、15、20、25 μM)或 DMSO 处理 24 小时 [2]。

使用 Annexin V-FITC 和碘化丙啶染色定量细胞凋亡。细胞用 IC₅₀ 值或 30 μM 的补骨脂素处理 24 小时,然后通过流式细胞术进行分析 [2]。

乳腺球形成实验:将 ALDH⁻ 和 ALDH⁺ 细胞的单细胞悬液以 4,000 个细胞/2 mL 的密度接种于添加了补充剂的 DMEM 或 MammoCult 培养基中,并在超低吸附培养板中培养。将细胞用IC₅₀浓度的补骨脂素处理,培养2-3周后计数乳腺球[2]。

软琼脂克隆形成实验:将ALDH⁻和ALDH⁺细胞(5 × 10³)用IC₅₀浓度的补骨脂素处理,培养10天。用结晶紫染色并计数克隆[2]。

侵袭实验:将细胞(1 × 10⁵)接种于孔径为8 μm的Matrigel包被的Transwell小室中,并用IC₅₀浓度的补骨脂素处理。 24 小时后,用结晶紫染色并计数下层膜上的侵袭性细胞 [2]。

伤口愈合迁移实验:将细胞培养至汇合,制造线性伤口,并将培养基更换为含有 IC₅₀ 浓度补骨脂素的新鲜培养基。使用 Biostation CT 每 2 小时监测一次伤口愈合情况,持续 36 小时,并测量伤口距离 [2]。

Western blot 分析:用 IC₅₀ 浓度的补骨脂素处理细胞 12 或 24 小时。制备全细胞裂解液,并通过SDS-PAGE分离蛋白质,转移至膜上,并用针对NOTCH1、HES1、E-钙黏蛋白、β-连环蛋白、波形蛋白、p65、BCL-2、BAX、caspase-3、caspase-9和PARP的抗体进行检测[2]。

免疫荧光染色:将生长在盖玻片上的细胞用IC₅₀浓度的补骨脂素处理24小时,固定后,与针对E-钙黏蛋白或β-连环蛋白的抗体孵育,随后与二抗孵育。用DAPI对细胞核进行染色,并通过共聚焦显微镜采集图像[2]。

siRNA转染:使用转染试剂将ALDH⁻和ALDH⁺细胞转染NOTCH1 siRNA(20 nM)或对照siRNA。 36小时后,采用台盼蓝排除法检测细胞增殖,并采用蛋白质印迹法分析蛋白质表达[2]。
动物实验
动物/疾病模型: BALB/c(Bagg ALBino)小鼠[1]
剂量: 5 mg/kg
给药途径: 腹腔注射;红外线照射(20 Gy)前30分钟和照射后1小时。
实验结果: 对红外线照射小鼠的抗炎作用。
将雄性BALB/c小鼠(8周龄,22-25 g)分组(每组n=5)。小鼠腹腔注射氯胺酮(80 mg/kg)和赛拉嗪(16 mg/kg)进行麻醉。使用Gamma Cell 40 Exactor(0.81 Gy/min)对胸部进行20 Gy的照射。在照射前30分钟和照射后1小时,腹腔注射溶于DMSO(500 μL)的补骨脂素(5 mg/kg)。对照组小鼠接受假照射。分别于照射后12小时和1周收集肺组织。制备肺组织裂解液用于RNA提取和实时RT-PCR[1]。

对于体内下拉实验,将肺组织裂解液(500 μg)与补骨脂素-琼脂糖4B珠孵育,并通过免疫印迹法检测结合的FLAP[1]。

雄性BALB/c小鼠(8周龄,22-25 g)被分为若干组(每组n=5)。小鼠经腹腔注射氯胺酮(80 mg/kg)和赛拉嗪(16 mg/kg)麻醉。使用 Gamma Cell 40 Exactor(0.81 Gy/min)对胸部进行 20 Gy 的照射。在照射前 30 分钟和照射后 1 小时,腹腔注射溶于 DMSO(500 μL)的补骨脂素(5 mg/kg)。对照组小鼠接受假照射。分别在照射后 12 小时和 1 周收集肺组织。制备肺组织裂解液用于 RNA 分离和实时 RT-PCR [1]。

对于体内 pull-down 实验,将肺组织裂解液(500 μg)与补骨脂素-琼脂糖 4B 珠孵育,并通过免疫印迹法检测结合的 FLAP [1]。
毒性/毒理 (Toxicokinetics/TK)
补骨脂素在浓度高达 25 μM 时,对正常乳腺上皮细胞 (MCF-12A) 的活力没有影响 [2]。
参考文献

[1]. Psoralidin, a dual inhibitor of COX-2 and 5-LOX, regulates ionizing radiation (IR)-induced pulmonary inflammation.Biochem Pharmacol. 2011 Sep 1;82(5):524-34.

[2]. Silencing NOTCH signaling causes growth arrest in both breast cancer stem cells and breast cancer cells.Br J Cancer. 2013 Nov 12;109(10):2587-96.

其他信息
补骨脂素是一种香豆素类化合物,其结构中香豆素的3位和9位被羟基取代,2位被异戊烯基取代。它是一种植物代谢产物,也是一种雌激素受体激动剂。补骨脂素属于香豆素、多酚和δ-内酯类化合物,其功能与其他香豆素类化合物相关。据报道,它存在于菜豆(Phaseolus lunatus)、三裂扁豆(Dolichos trilobus)和其他具有相关数据的生物体中。另见:补骨脂果实(部分)。
补骨脂素是一种天然存在的呋喃香豆素,提取自亚洲药用植物补骨脂(Psoralea corylifolia)的种子。它具有多种生物活性,包括抗氧化、抗菌、抗抑郁、抗凝血、抗炎、抗过敏、ROS调节和抗癌活性[2]。

本研究表明,补骨脂素通过抑制NOTCH1信号通路靶向乳腺癌细胞和乳腺癌干细胞,导致细胞生长停滞、抑制上皮-间质转化(EMT)并诱导细胞凋亡。它下调促生存信号通路(NF-κB、BCL-2)并激活促凋亡通路(BAX、caspase级联)。该化合物还抑制与EMT相关的细胞迁移和侵袭[2]。
*注: 文献方法仅供参考, InvivoChem并未独立验证这些方法的准确性
化学信息 & 存储运输条件
分子式
C20H16O5
分子量
336.34
精确质量
336.099
CAS号
18642-23-4
PubChem CID
5281806
外观&性状
White to off-white solid powder
密度
1.4±0.1 g/cm3
沸点
458.8±34.0 °C at 760 mmHg
熔点
290-292°
闪点
231.3±25.7 °C
蒸汽压
0.0±1.2 mmHg at 25°C
折射率
1.689
LogP
5.03
tPSA
83.81
氢键供体(HBD)数目
2
氢键受体(HBA)数目
5
可旋转键数目(RBC)
2
重原子数目
25
分子复杂度/Complexity
554
定义原子立体中心数目
0
SMILES
O1C2C([H])=C(C([H])=C([H])C=2C2C(=O)OC3C([H])=C(C(C([H])([H])/C(/[H])=C(\C([H])([H])[H])/C([H])([H])[H])=C([H])C=3C1=2)O[H])O[H]
InChi Key
YABIJLLNNFURIJ-UHFFFAOYSA-N
InChi Code
InChI=1S/C20H16O5/c1-10(2)3-4-11-7-14-17(9-15(11)22)25-20(23)18-13-6-5-12(21)8-16(13)24-19(14)18/h3,5-9,21-22H,4H2,1-2H3
化学名
3,9-dihydroxy-2-(3-methylbut-2-enyl)-[1]benzofuro[3,2-c]chromen-6-one
HS Tariff Code
2934.99.9001
存储方式

Powder      -20°C    3 years

                     4°C     2 years

In solvent   -80°C    6 months

                  -20°C    1 month

运输条件
Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)
溶解度数据
溶解度 (体外实验)
DMSO : ~50 mg/mL (~148.66 mM)
溶解度 (体内实验)
配方 1 中的溶解度: 2.08 mg/mL (6.18 mM) in 10% DMSO + 40% PEG300 + 5% Tween80 + 45% Saline (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 悬浮液;超声助溶。
例如,若需制备1 mL的工作液,可将100 μL 20.8 mg/mL澄清DMSO储备液加入400 μL PEG300中,混匀;然后向上述溶液中加入50 μL Tween-80,混匀;加入450 μL生理盐水定容至1 mL。
*生理盐水的制备:将 0.9 g 氯化钠溶解在 100 mL ddH₂O中,得到澄清溶液。

配方 2 中的溶解度: ≥ 2.08 mg/mL (6.18 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% Corn Oil (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。
例如,若需制备1 mL的工作液,可将 100 μL 20.8 mg/mL 澄清 DMSO 储备液加入到 900 μL 玉米油中并混合均匀。

请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解配方/方案:
1、请先配制澄清的储备液(如:用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液));
2、取适量母液,按从左到右的顺序依次添加助溶剂,澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明,并不一定代表此产品 的实际溶解配方):
10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline);
假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中,混合均匀/澄清;向上述体系中加入50 μL Tween-80,混合均匀/澄清;然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL;

3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例;
4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出,可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶;
5、为保证最佳实验结果,工作液请现配现用!
6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液,请查看说明书或联系我们;
7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。
制备储备液 1 mg 5 mg 10 mg
1 mM 2.9732 mL 14.8659 mL 29.7318 mL
5 mM 0.5946 mL 2.9732 mL 5.9464 mL
10 mM 0.2973 mL 1.4866 mL 2.9732 mL

1、根据实验需要选择合适的溶剂配制储备液 (母液):对于大多数产品,InvivoChem推荐用DMSO配置母液 (比如:5、10、20mM或者10、20、50 mg/mL浓度),个别水溶性高的产品可直接溶于水。产品在DMSO 、水或其他溶剂中的具体溶解度详见上”溶解度 (体外)”部分;

2、如果您找不到您想要的溶解度信息,或者很难将产品溶解在溶液中,请联系我们;

3、建议使用下列计算器进行相关计算(摩尔浓度计算器、稀释计算器、分子量计算器、重组计算器等);

4、母液配好之后,将其分装到常规用量,并储存在-20°C或-80°C,尽量减少反复冻融循环。

计算器

摩尔浓度计算器可计算特定溶液所需的质量、体积/浓度,具体如下:

  • 计算制备已知体积和浓度的溶液所需的化合物的质量
  • 计算将已知质量的化合物溶解到所需浓度所需的溶液体积
  • 计算特定体积中已知质量的化合物产生的溶液的浓度
使用摩尔浓度计算器计算摩尔浓度的示例如下所示:
假如化合物的分子量为350.26 g/mol,在5mL DMSO中制备10mM储备液所需的化合物的质量是多少?
  • 在分子量(MW)框中输入350.26
  • 在“浓度”框中输入10,然后选择正确的单位(mM)
  • 在“体积”框中输入5,然后选择正确的单位(mL)
  • 单击“计算”按钮
  • 答案17.513 mg出现在“质量”框中。以类似的方式,您可以计算体积和浓度。

稀释计算器可计算如何稀释已知浓度的储备液。例如,可以输入C1、C2和V2来计算V1,具体如下:

制备25毫升25μM溶液需要多少体积的10 mM储备溶液?
使用方程式C1V1=C2V2,其中C1=10mM,C2=25μM,V2=25 ml,V1未知:
  • 在C1框中输入10,然后选择正确的单位(mM)
  • 在C2框中输入25,然后选择正确的单位(μM)
  • 在V2框中输入25,然后选择正确的单位(mL)
  • 单击“计算”按钮
  • 答案62.5μL(0.1 ml)出现在V1框中
g/mol

分子量计算器可计算化合物的分子量 (摩尔质量)和元素组成,具体如下:

注:化学分子式大小写敏感:C12H18N3O4  c12h18n3o4
计算化合物摩尔质量(分子量)的说明:
  • 要计算化合物的分子量 (摩尔质量),请输入化学/分子式,然后单击“计算”按钮。
分子质量、分子量、摩尔质量和摩尔量的定义:
  • 分子质量(或分子量)是一种物质的一个分子的质量,用统一的原子质量单位(u)表示。(1u等于碳-12中一个原子质量的1/12)
  • 摩尔质量(摩尔重量)是一摩尔物质的质量,以g/mol表示。
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配液计算器可计算将特定质量的产品配成特定浓度所需的溶剂体积 (配液体积)

  • 输入试剂的质量、所需的配液浓度以及正确的单位
  • 单击“计算”按钮
  • 答案显示在体积框中
动物体内实验配方计算器(澄清溶液)
第一步:请输入基本实验信息(考虑到实验过程中的损耗,建议多配一只动物的药量)
第二步:请输入动物体内配方组成(配方适用于不溶/难溶于水的化合物),不同的产品和批次配方组成不同,如对配方有疑问,可先联系我们提供正确的体内实验配方。此外,请注意这只是一个配方计算器,而不是特定产品的确切配方。
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计算结果:

工作液浓度 mg/mL;

DMSO母液配制方法 mg 药物溶于 μL DMSO溶液(母液浓度 mg/mL)。如该浓度超过该批次药物DMSO溶解度,请首先与我们联系。

体内配方配制方法μL DMSO母液,加入 μL PEG300,混匀澄清后加入μL Tween 80,混匀澄清后加入 μL ddH2O,混匀澄清。

(1) 请确保溶液澄清之后,再加入下一种溶剂 (助溶剂) 。可利用涡旋、超声或水浴加热等方法助溶;
            (2) 一定要按顺序加入溶剂 (助溶剂) 。

生物数据图片
  • Psoralidin inhibits cell growth, mammosphere formation and induces apoptosis in BC and BCSCs. (A) ALDH− cells, ALDH+ cells, commercial BCSCs, and normal breast epithelial cells (MCF-12A) were treated with vehicle (DMSO) or the indicated dose of Pso for 24 h. Cell viability was determined using a trypan blue exclusion assay. Data are expressed as mean±s.e.m. of two independent experiments done in triplicates. (B) Anchorage-independent growth of ALDH− and ALDH+ cells was determined by assessing the colony-forming ability of these cells. Approximately, 5 × 103 cells were treated with Pso at the IC50 value specific to the cell type. Cells were monitored for 10 days, and colonies were stained with crystal violet and counted manually. Data are expressed as mean±s.e.m. of three independent experiments. (C) A mammosphere assay was performed using 4 × 103 cells (ALDH− and ALDH+ cells) on ultra-low attachment plates. Cells were treated with IC50 dose of Pso and allowed to grow for 2 weeks followed by counting of mammospheres. Data are expressed as mean±s.e.m. of two independent experiments. (D) To assess apoptosis induced by Pso, ALDH− cells, ALDH+ cells, and commercial BCSCs were treated with Pso for 24 h. Cells were stained with FITC-Annexin-V and propidium iodide and analyzed by flow cytometery. Data are expressed as mean±s.e.m. of three independent experiments. Student's t-test was used to calculate statistical significance. *P<0.05, **P<0.005, and ***P<0.0001. The full colour version of this figure is available at British Journal of Cancer online.[2]. Suman S, et al. Silencing NOTCH signaling causes growth arrest in both breast cancer stem cells and breast cancer cells.Br J Cancer. 2013 Nov 12;109(10):2587-96.
  • Psoralidin inhibits NOTCH1 signaling and EMT in ALDH− and ALDH+ cells. (A) ALDH− and ALDH+ cells were treated with vehicle or the IC50 dose of Pso. Total cell lysates were prepared, and equal amounts of protein were subjected to western blot analysis for NOTCH1, HES1, and actin proteins. (B) Total protein lysates were utilized for western blot analysis to determine the expression of the EMT markers E-cadherin, β-catenin, and vimentin. Actin was used as a loading control. (C) E-cadherin, and (D) β-catenin expression and localization were visualized by confocal microscopy in vehicle- and Pso-treated ALDH− and ALDH+ cells.[2]. Suman S, et al. Silencing NOTCH signaling causes growth arrest in both breast cancer stem cells and breast cancer cells.Br J Cancer. 2013 Nov 12;109(10):2587-96.
  • Psoralidin inhibits migration and invasion in BCCs and BCSCs. (A) ALDH− cells, ALDH+ cells, and commercial BCSCs were plated in six-well plates and grown until confluent. A uniform wound was created in the center of the monolayer. The wound gap was photographed in a Biostation CT programmed to take pictures every 2 h. The distance between the edges of wound was measured in μm using NIS-Element software, and statistical analysis was performed. Data are expressed as mean±s.e.m. of two independent experiments. (B) A transwell invasion assay was performed with ALDH− cells, ALDH+ cells, and commercial BCSCs using Boyden chambers. The cells were treated with vehicle or the IC50 dose of Pso and allowed to migrate towards the lower chamber. The invasive cells were stained with crystal violet and counted. Data are expressed as mean±s.e.m. of three independent experiments. Student's t-test was used to calculate statistical significance. *P<0.05, **P<0.005, and ***P<0.0001.[2]. Suman S, et al. Silencing NOTCH signaling causes growth arrest in both breast cancer stem cells and breast cancer cells.Br J Cancer. 2013 Nov 12;109(10):2587-96.
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