MIP-1α-CCR1 ( Ki = 1 nM ); RANTES-CCR1 ( Ki = 2.8 nM ); MCP-3-CCR1 ( Ki = 5.5 nM )
CC chemokine receptor-1 (CCR1): It can displace CCR1 ligands including macrophage inflammatory protein-1α (MIP-1α), RANTES, and monocyte chemotactic protein-3 (MCP-3) with high affinity, and the Ki values range from 1 nM to 5.5 nM[1]
- Murine CCR1: The non-peptide antagonist BX471 can displace radiolabeled MIP-1α from murine CCR1[2]
- Human CCR1: BX471 can inhibit the ability of MIP-1α/CCL3 to increase Ca²⁺ transients in HEK 293 cells expressing human CCR1[2]

体外活性：BX471（也称为 ZK-811752）是一种新型口服非肽 CCR1（CC 趋化因子受体-1）拮抗剂，对人 CCR1 的 Ki 为 1 nM，可用于治疗慢性炎症性疾病。 BX471 对 CCR1 的选择性是 CCR2、CCR5 和 CXCR4 的 250 倍。 CCR1是治疗自身免疫性疾病的主要治疗靶点。与 28 G 蛋白偶联受体相比，BX 471 对 CCR1 的选择性高出 10,000 倍以上。竞争结合研究表明，BX 471 能够以高亲和力（K(i) 范围为 1 nm）取代 CCR1 配体巨噬细胞炎症蛋白-1α (MIP-1α)、RANTES 和单核细胞趋化蛋白-3 (MCP-3)至 5.5 nm）。 BX 471 是一种有效的功能拮抗剂，因为它能够抑制许多 CCR1 介导的效应，包括 Ca(2+) 动员、细胞外酸化率增加、CD11b 表达和白细胞迁移。此外，BX 471 能有效减少多发性硬化症大鼠实验性过敏性脑脊髓炎模型中的疾病。激酶测定：BX471（也称为 ZK-811752）是一种新型口服非肽 CCR1（CC 趋化因子受体-1）拮抗剂，对人 CCR1 的 Ki 为 1 nM，可能可用于治疗慢性炎症性疾病。 BX471 对 CCR1 的选择性是 CCR2、CCR5 和 CXCR4 的 250 倍。 CCR1是治疗自身免疫性疾病的主要治疗靶点。细胞测定：BX471 (0.1-10 μM) 在分离的血液单核细胞的剪切流中显示出对 RANTES 介导的和对 IL-1β 激活的微血管内皮的抗剪切粘附的剂量依赖性抑制。 BX471 还抑制 RANTES 介导的 T 淋巴细胞与活化内皮细胞的粘附。BX471 还能够以浓度依赖性方式取代 125I-MIP-1α/CCL3 与小鼠 CCR1 的结合，Ki 为 215±46 nM。增加 BX471 浓度可抑制人和小鼠 CCR1 中 MIP-1α/CCL3 诱导的 Ca2+ 瞬变，IC50 分别为 5.8±1 nM 和 198±7 nM。BX 471 是一种有效的功能拮抗剂，因为它能够抑制CCR1 介导的效应包括 Ca2+ 动员、细胞外酸化率增加、CD11b 表达和白细胞迁移。与 28 个 G 蛋白偶联受体相比，BX 471 对 CCR1 的选择性高出 10,000 倍以上。

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BX471是一种强效功能性拮抗剂，能够抑制一系列由CCR1介导的效应，具体包括细胞内Ca²⁺动员、细胞外酸化速率升高、CD11b分子表达以及白细胞迁移。此外，与28种G蛋白偶联受体相比，BX471对CCR1的选择性超过10,000倍[1]
- 在转染了小鼠CCR1的HEK细胞中，BX471可置换放射性标记的MIP-1α与小鼠CCR1的结合。当负载Fluo-3（一种钙离子荧光探针）且分别表达人CCR1和小鼠CCR1的HEK293细胞，经不同浓度BX471预处理15分钟后，再用CCR1激动剂MIP-1α/CCL3刺激，BX471可抑制MIP-1α/CCL3诱导的这些细胞内Ca²⁺瞬变升高[2]
- 在微血管内皮细胞体外流动实验中，BX471可阻断由RANTES诱导的单核细胞在炎症内皮细胞上的牢固黏附[4]
- 对于野生型小鼠，在7天的肾脏缺血再灌注损伤模型中，用特异性CCR1拮抗剂BX471预处理，可抑制中性粒细胞和巨噬细胞的浸润[3]

BX 471在多发性硬化大鼠EAE模型中的疗效[1]
在确定BX 471在多发性硬化大鼠EAE模型中的疗效之前，我们测试了其抑制MIP-1α与大鼠CCR1受体结合的能力。对BX 471竞争结合研究的Scatchard分析表明，该化合物能够以121±60 nm的K i抑制趋化因子与大鼠CCR1的结合（数据未显示），这对大鼠CCR2的有效性比人类CCR1低约100倍。此外，BX 471不抑制趋化因子与大鼠CCR5的结合（数据未显示），因此对大鼠CCR1具有特异性。[1]
根据大鼠的药代动力学研究，我们确定每天皮下注射三次BX 471会使血液药物水平达到1至5μm（数据未显示），我们计算出这大约是大鼠CCR1受体K i的10-50倍，应该足以抑制MIP-1α的结合。不幸的是，与狗体内获得的药代动力学数据相反，BX 471在大鼠体内的口服率很低（<20%，数据未显示）。基于这些研究，建立了多发性硬化大鼠EAE模型。 动物每天皮下注射三次赋形剂或5、20和50 mg/kg的BX 471。CCR1拮抗剂BX 471剂量依赖性地降低了疾病的严重程度（图10A）。在最高剂量50mg/kg时，与赋形剂对照组相比，临床评分显著降低，在p=0.05时具有统计学意义（通过方差分析分析）。然而，即使在较低的两个剂量的BX 471，20 mg/kg和5 mg/kg，临床评分仍然明显下降。通过将数据表示为每个治疗组的平均累积临床评分，可以更容易地观察到这一点（图10B）。通过t检验对平均累积临床评分数据的统计分析显示，与赋形剂对照组相比，50和20mg/kg剂量分别为p=0.003和p=0.014，具有统计学意义。

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BX471（20 mg/kg，皮下注射）在约 30 分钟内达到峰值血浆水平 9 μM，并在 2 小时后迅速下降至约 0.4 μM。 4 至 8 小时后，血浆药物水平降至 0.1 μM 或更低。用 20 mg/kg BX471 治疗 10 天的小鼠显示间质 CD45 阳性白细胞减少约 55%。 BX471 对外周血中 CCR5 阳性 CD8 细胞的数量具有临界显着影响。与载体对照相比，BX471 使 UUO 肾脏中 FSP1 阳性细胞的数量减少 65%。用 BX471 预处理可减少缺血再灌注损伤后肾脏中巨噬细胞和中性粒细胞的积累。BX 471（4 mg/kg，口服或静脉注射）是口服有效，狗体内生物利用度为 60%。此外，BX 471 能有效减少多发性硬化症大鼠实验性过敏性脑脊髓炎模型中的疾病。

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在大鼠多发性硬化症的实验性变态反应性脑脊髓炎模型中，BX471能有效减轻疾病症状[1]
- 在单侧输尿管梗阻（UUO）小鼠模型中，与对照组相比，经BX471处理（处理时间为0-10天和6-10天）的小鼠，其梗阻侧肾脏的间质巨噬细胞和淋巴细胞浸润减少40%-60%。经药物处理的小鼠，CCR1和CCR5的mRNA水平也显著降低，流式细胞术分析显示CD8⁺/CCR5⁺T细胞数量相应减少。与溶媒对照组相比，肾纤维化相关标志物（包括间质成纤维细胞数量、间质容积以及I型胶原的mRNA和蛋白表达水平）在BX471处理组中均显著降低。但仅在0-5天给予药物处理时，该药物无明显疗效[2]
- 在大鼠异位心脏移植排斥模型中，当动物同时接受BX471和亚治疗剂量环孢素（2.5mg/kg，单独使用该剂量环孢素无法延缓移植排斥）处理时，其延缓移植排斥的效果远优于单独使用环孢素或BX471处理的动物[4]
- 在7天的小鼠肾脏缺血再灌注损伤模型中，到第7天时，CCR1缺陷小鼠受损肾脏中的中性粒细胞数量比野生型对照小鼠少35%，巨噬细胞数量少45%。此外，与野生型对照相比，CCR1缺陷小鼠受损肾脏中CCR1配体CCL3（MIP-1α）和CCL5（RANTES）的水平更低。损伤后可观察到局部白细胞增殖和凋亡现象，但这些过程不依赖于CCR1。而且，野生型小鼠和CCR1缺陷小鼠受损肾脏的坏死、纤维化损伤程度以及肾功能下降程度无显著差异[3]

趋化因子结合研究[1]
如前所述，通过过滤进行结合分析。使用终浓度约为0.1-0.2 nm的放射性标记趋化因子作为配体。使用每个测定点8000或300000个细胞表达人CCR1的HEK293细胞作为受体来源。在存在100nm未标记趋化因子的情况下测定非特异性结合。结合数据用计算机程序IGOR进行曲线拟合，以确定亲和力和位点数量。

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胞浆Ca2+测量[1]
将表达人CCR1的HEK293细胞以80000个细胞/孔的速度铺在聚-d-赖氨酸涂覆的黑壁96孔板上，并培养过夜。然后，在Hanks的平衡盐溶液中，在37°C下用4μm Fluo-3（一种钙敏感的荧光染料）装载细胞60分钟，该溶液含有20 mm Hepes、3.2 mm氯化钙、1%胎牛血清、2.5 mm丙磺舒和0.04%普朗尼克酸。使用Denley洗涤器用测定缓冲液（Hanks平衡盐溶液，含有20mmHepes、2.5mm丙磺舒和0.1%牛血清白蛋白）轻轻洗涤细胞4次，去除多余的染料。在37°C下加入激动剂后，立即用FLIPR测量细胞内游离Ca2+浓度的变化。为了检测BX471的拮抗活性，在加入激动剂之前，用该化合物对细胞进行15分钟的预处理。根据方程式Ca2+=K D（F−F min）/（F max−F）计算细胞内Ca2+浓度（nm）（7）。K D是Fluo-3和Ca2+复合物的离解常数（Fluo-3为390 nm）。F是测量的荧光强度。F max是在0.1%triton X-100存在的情况下测定的最大荧光强度。F min是在0.1%曲拉通X-100加5 mmEGTA存在下测定的最小荧光强度。

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BX471（也称为 ZK-811752）是一种新型口服非肽 CCR1（CC 趋化因子受体-1）拮抗剂，对人 CCR1 的 Ki 为 1 nM。它可能有助于治疗慢性炎症。与 CCR2、CCR5 和 CXCR4 相比，BX471 对 CCR1 的偏好程度高出 250 倍。在治疗自身免疫性疾病时，CCR1 是首要治疗靶点。

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CCR1配体竞争结合实验：将表达CCR1的细胞与放射性标记的CCR1配体（如¹²⁵I-MIP-1α/CCL3）以及不同浓度的BX471共同孵育。孵育一段时间后，通过离心细胞终止结合反应，随后测定放射性标记配体与CCR1的特异性结合情况，并根据置换数据计算BX471置换配体的Ki值。实验中需测定非特异性结合，并从总结合量中减去非特异性结合量以获得特异性结合量[2]
- 钙离子动员实验：将表达CCR1的细胞（如HEK293细胞）负载钙离子敏感性荧光染料（如Fluo-3）。用不同浓度的BX471预处理负载染料的细胞15分钟，之后用CCR1激动剂（如MIP-1α/CCL3）刺激细胞。通过检测荧光强度的变化（荧光强度变化反映细胞内钙离子浓度变化），评估BX471对CCR1介导的钙离子动员的抑制作用[2]

BX471 (0.1–10 μM) 以剂量依赖性方式抑制分离血液单核细胞剪切流中 IL-1β 激活的微血管内皮的抗剪切和 RANTES 介导的粘附。此外，BX471 还可抑制 T 细胞 RANTES 介导的与活化内皮细胞的粘附。 BX471 的 Ki 为 215±46 nM，还可以以浓度依赖性方式取代 125I-MIP-1α/CCL3 与小鼠 CCR1 的结合。 BX471 在人和小鼠 CCR1 中抑制 MIP-1α/CCL3 诱导的 Ca2+ 瞬变，随着化合物浓度的增加，IC50 值分别为 5.8±1 nM 和 198±7 nM。 BX 471 能够阻断多种 CCR1 介导的过程，例如白细胞迁移、细胞外酸化率增加、Ca2+ 动员和 CD11b 表达，使其成为强大的功能拮抗剂。 BX 471 对 CCR1 的选择性比 28 G 蛋白偶联受体高 10,000 倍以上。

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外周血单个核细胞CD11b的表达[1]
如上所述测量全血测定中外周血单核细胞上表达的CD11b。简而言之，通过静脉穿刺将人全血收集到含有EDTA的2.5ml Vacutainer管中。血液保持在室温下，抽血后立即使用。全血样本（200μl）在37°C下用或不用1μmBX471预处理15分钟，然后用或不用100 nm MIP-1α再处理15分钟。通过加入1 ml冷磷酸盐缓冲盐溶液洗涤液终止反应。试管离心（200×g，4°C下7分钟），通过抽吸去除上清液。将细胞沉淀重新悬浮在冷磷酸盐缓冲盐溶液中，加入10μl 1mg/ml热聚集IgG，并在4°C下孵育试管10分钟。将抗体CD11b FITC（5μl）和CD14 PE（20μl）加入每个检测管中，在4°C下孵育20分钟。最后，加入1ml冰冷的磷酸盐缓冲盐溶液，如上所述将细胞造粒，并通过FACScan进行分析。

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白细胞迁移实验：采用合适的细胞迁移体系（如Transwell小室），下室中加入可通过CCR1诱导白细胞迁移的趋化因子，在上室或上下两室中加入不同浓度的BX471。将白细胞置于上室，孵育特定时间后，计数迁移至下室的白细胞数量。通过比较加入和未加入BX471时的白细胞迁移数量，评估BX471对CCR1介导的白细胞迁移的抑制作用[1]
- CD11b表达实验：在存在或不存在不同浓度BX471的条件下，用CCR1激动剂处理白细胞。孵育后，用荧光标记的CD11b抗体对细胞进行染色，通过流式细胞术检测白细胞表面CD11b的表达水平。比较处理组和对照组的荧光强度，分析BX471对CCR1介导的CD11b表达的影响[1]
- 趋化因子受体mRNA实时荧光定量PCR实验：从肾脏组织（如单侧输尿管梗阻小鼠的梗阻侧和对侧肾脏）中提取总RNA，将RNA逆转录为cDNA。使用针对CCR1、CCR2、CCR5以及内参基因（如GAPDH）的特异性引物进行实时PCR。将趋化因子受体的mRNA表达水平以GAPDH表达水平为参照进行标准化处理，比较BX471处理组和对照组中受体的相对表达水平，从而评估BX471对趋化因子受体mRNA表达的影响[2]
- 白细胞亚群流式细胞术分析实验：从肾脏组织或血液中分离细胞，用荧光标记的细胞表面标志物抗体（如识别白细胞的CD45、识别淋巴细胞的CD3、识别巨噬细胞的F4/80、识别中性粒细胞的Gr-1、识别CD8⁺T细胞的CD8以及CCR5）对细胞进行染色。通过流式细胞术分析染色细胞，比较BX471处理组和对照组中不同白细胞亚群（如CD45⁺白细胞、CD3⁺淋巴细胞、F4/80⁺巨噬细胞、Gr-1⁺中性粒细胞、CD8⁺/CCR5⁺T细胞）的百分比，评估BX471对白细胞浸润和亚群分布的影响[2, 3]
- I型胶原蛋白Western blot实验：从肾脏组织中提取蛋白质，将蛋白质样品通过SDS-PAGE（十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳）分离后转移到膜上。用I型胶原 primary抗体孵育膜，再用偶联酶（如辣根过氧化物酶）的secondary抗体孵育。使用化学发光底物使蛋白条带显影，对I型胶原条带的强度进行定量，比较BX471处理组和对照组中的蛋白表达水平，评估BX471对肾纤维化的影响[2]
- 免疫组化染色实验：制备肾脏组织切片，对切片进行脱蜡、水化和抗原修复处理。用针对特定标志物（如识别白细胞的CD45、识别成纤维细胞的FSP1）的primary抗体孵育切片，清洗后用偶联荧光或酶标记的secondary抗体孵育。在显微镜下观察染色切片，对阳性细胞数量或染色程度进行定量，比较BX471处理组和对照组中白细胞浸润和成纤维细胞聚集情况[2, 3]
- 中性粒细胞萘酚AS-D氯乙酸酯酶染色实验：用萘酚AS-D氯乙酸酯酶试剂对肾脏组织切片进行染色，中性粒细胞会呈现阳性染色（橙红色颗粒）。在显微镜下观察染色切片，计数阳性中性粒细胞数量，评估BX471对中性粒细胞浸润的影响[3]
- 细胞凋亡TUNEL实验：制备肾脏组织切片，使用TUNEL试剂盒进行TUNEL染色。用末端脱氧核苷酸转移酶和荧光标记的dUTP孵育切片，凋亡细胞会呈现阳性荧光。计数TUNEL阳性细胞数量，评估CCR1缺失（与BX471作用靶点相关）对肾脏细胞凋亡的影响[3]
- 细胞增殖Ki67染色实验：用针对Ki67（一种细胞增殖标志物）的primary抗体孵育肾脏组织切片，再用secondary抗体孵育。在显微镜下观察Ki67阳性细胞（处于增殖期的细胞），计数阳性细胞数量，评估CCR1缺失对肾脏细胞增殖的影响[3]

BX 471 在犬体内的药代动力学 [1]
本研究考察了 BX 471 在清醒犬体内的口服生物利用度。将 BX 471 以 4 mg/kg 的剂量溶于 40% 环糊精生理盐水中，通过头静脉推注或灌胃的方式给予空腹雄性比格犬。制备血浆样本，并采用高效液相色谱-质谱联用（HPLC-MS）法测定血浆中化合物的浓度。如图 9 所示，BX 471 在口服给药后约 2 小时达到血浆峰浓度，并维持在可测量的浓度长达 6 小时。BX 471 的分布容积（0.5 L/kg）接近体液容积（0.6 L/kg），表明该化合物主要分布于体液中（表 III）。犬体内清除率较低，为 2 ml/min/kg（不足肝脏总血流量的 10%），导致其终末半衰期中等，为 3 小时（图 9 和表 III）。对于口服给药的犬，BX 471 的半衰期约为 3 小时。使用 TOPFIT 软件分析曲线下面积 (AUC) 测量值计算口服生物利用度百分比表明，BX 471 在空腹犬中是一种口服吸收的药物，口服生物利用度约为 60%（图 9 和表 III）。

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在犬中，BX471 具有口服活性，口服生物利用度为 60%[1]
- 在小鼠中，单次皮下注射 20 mg/kg BX471（溶于 40% 环糊精）后，BX471 的血浆浓度随时间变化，显示出一定的药代动力学特征（文献中未详细描述半衰期等具体参数）[2]

BX 471 对全身毒性的影响 [1]
为证明 BX 471 对 CCR1 的拮抗作用并非由该化合物的细胞毒性引起，我们用浓度高达 10 μM 的 BX 471 处理 THP-1 或 CCR1 转染的 HEK293 细胞 24 小时，并通过 WST-1 染色监测细胞毒性。未观察到明显的毒性（数据未显示）。我们进一步在体内检测了 BX 471 的毒性，方法是对连续 30 天以 20 mg/kg/天剂量给予 BX 471 的兔子进行一系列血清诊断试验，包括肝肾功能试验和血电解质检测。所有检测结果均在正常范围内（数据未显示）。结果表明，BX 471 对 CCR1 活化的抑制并非由于细胞毒性所致，且长期使用该药物对动物的正常生理功能无不良影响。文献中未提供 BX471 的半数致死剂量、肝肾毒性、药物相互作用和血浆蛋白结合率等信息[1, 2, 3, 4]。

[1]. Identification and characterization of a potent, selective, and orally active antagonist of the CC chemokine receptor-1. J Biol Chem. 2000 Jun 23;275(25):19000-8.

[2]. A chemokine receptor CCR-1 antagonist reduces renal fibrosis after unilateral ureter ligation. J Clin Invest. 2002 Jan;109(2):251-9.

[3]. Chemokine receptor CCR1 regulates inflammatory cell infiltration after renal ischemia-reperfusion injury. J Immunol. 2008 Dec 15;181(12):8670-6.

[4]. A non-peptide functional antagonist of the CCR1 chemokine receptor is effective in rat heart transplant rejection. J Biol Chem. 2001 Feb 9;276(6):4199-204.

CC趋化因子受体1 (CCR1) 是治疗自身免疫性疾病的主要靶点。通过高通量筛选和化学优化，我们鉴定出一种新型非肽类CCR1拮抗剂，即RN-[5-氯-2-[2-[4-[(4-氟苯基)甲基]-2-甲基-1-哌嗪基]-2-氧代乙氧基]苯基]脲盐酸盐 (BX 471)。竞争性结合实验表明，BX 471能够以高亲和力（K_i范围为1 nM至5.5 nM）置换CCR1配体巨噬细胞炎症蛋白-1α (MIP-1α)、RANTES和单核细胞趋化蛋白-3 (MCP-3)。 BX 471 是一种强效的功能性拮抗剂，其抑制多种 CCR1 介导的效应，包括 Ca²⁺ 动员、细胞外酸化率增加、CD11b 表达和白细胞迁移。与 28 种 G 蛋白偶联受体相比，BX 471 对 CCR1 的选择性高出 10,000 倍以上。药代动力学研究表明，BX 471 具有口服活性，在犬体内的生物利用度为 60%。此外，BX 471 能有效减轻大鼠实验性变应性脑脊髓炎（多发性硬化症）模型中的疾病症状。本研究首次证实，非肽类趋化因子受体拮抗剂在自身免疫性疾病动物模型中具有疗效。总之，我们发现了一种强效、选择性高且口服有效的 CCR1 拮抗剂，该药物可能有助于治疗慢性炎症性疾病。 [1]趋化因子及其受体的表达被认为与单侧输尿管梗阻（UUO）后的白细胞浸润和进行性肾纤维化有关。我们假设使用非肽类拮抗剂BX471阻断趋化因子受体CCR1可以减少UUO后的白细胞浸润和肾纤维化。经BX471治疗的小鼠（第0-10天和第6-10天）的UUO肾脏显示，与对照组相比，间质巨噬细胞和淋巴细胞浸润减少了40-60%。治疗组小鼠的CCR1和CCR5 mRNA水平也显著降低，FACS分析显示CD8+/CCR5+ T细胞数量也相应减少。与载体对照组相比，BX471治疗显著降低了肾纤维化标志物，例如间质成纤维细胞、间质体积以及I型胶原蛋白的mRNA和蛋白表达。相反，仅在第0至5天给药则无效。总之，阻断CCR1可显著减少UUO后的细胞浸润和肾纤维化。最重要的是，延迟给药也有效。因此，我们得出结论，阻断CCR1可能代表一种新的治疗策略，用于减少细胞浸润和肾纤维化，而细胞浸润和肾纤维化是导致终末期肾衰竭进展的主要因素。[2]

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中性粒细胞和巨噬细胞在肾脏缺血再灌注损伤后迅速浸润肾脏，但这些细胞类型的具体分子募集机制尚未完全阐明。本文通过遗传学和药理学证据，证实趋化因子受体CCR1在7天小鼠肾脏缺血再灌注损伤模型中对巨噬细胞和中性粒细胞浸润起积极作用。到第7天，CCR1缺失小鼠受损肾脏中的中性粒细胞和巨噬细胞数量分别比野生型对照小鼠减少35%和45%。用特异性CCR1拮抗剂BX471预处理野生型小鼠也能抑制该模型中的中性粒细胞和巨噬细胞浸润。与野生型对照小鼠相比，CCR1缺失小鼠受损肾脏中CCR1配体CCL3（MIP-1α）和CCL5（RANTES）的含量也降低，提示这些炎症趋化因子来源于白细胞，并且该模型中存在CCR1依赖的白细胞浸润正反馈环路。损伤后检测到局部白细胞增殖和凋亡，但这些过程并不依赖于CCR1。此外，野生型小鼠和CCR1缺陷型小鼠受损肾脏的坏死和纤维化损伤程度以及肾功能下降情况相似。因此，在肾脏缺血再灌注损伤的小鼠模型中，CCR1似乎调节巨噬细胞和中性粒细胞向肾脏的迁移，但这种活性似乎并不影响组织损伤。[3]

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趋化因子如RANTES似乎在器官移植排斥反应中发挥作用。由于RANTES是趋化因子受体CCR1的强效激动剂，我们研究了CCR1受体拮抗剂BX471在大鼠异位心脏移植排斥模型中的疗效。 BX471联合亚治疗剂量环孢素（2.5 mg/kg）治疗动物，虽然单独使用环孢素或BX471治疗并不能有效延长移植排斥反应，但其疗效远优于单独使用环孢素或BX471治疗动物。我们通过体外微血管内皮细胞流动实验研究了CCR1拮抗剂的作用机制，发现该拮抗剂能够阻断RANTES诱导的单核细胞在炎症内皮细胞上的牢固黏附。这些数据共同表明CCR1在同种异体移植排斥反应中发挥着重要作用。[4]

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BX471是一种新型非肽类CCR1拮抗剂。CCR1是治疗自身免疫性疾病的关键靶点。本研究首次证实，非肽类趋化因子受体拮抗剂在自身免疫性疾病动物模型中有效，提示BX471可能对治疗慢性炎症性疾病有益[1]
- 趋化因子及其受体的表达被认为与单侧输尿管梗阻（UUO）后白细胞浸润和进行性肾纤维化有关。使用BX471阻断CCR1可显著减少UUO后的细胞聚集和肾纤维化，且迟发性治疗也有效。因此，CCR1阻断可能是一种减少细胞浸润和肾纤维化的新型治疗策略，而细胞浸润和肾纤维化是导致终末期肾衰竭的重要因素[2]
- 中性粒细胞和巨噬细胞在肾脏缺血再灌注损伤后迅速浸润肾脏，但这些细胞类型的具体分子募集机制尚未完全阐明。 BX471作为一种特异性CCR1拮抗剂，可以调节肾脏缺血再灌注损伤小鼠模型中巨噬细胞和中性粒细胞向肾脏的迁移，但这种作用似乎并不影响组织损伤[3]
-趋化因子如RANTES似乎在器官移植排斥中发挥作用。由于 RANTES 是趋化因子受体 CCR1 的强效激动剂，因此，作为 CCR1 拮抗剂的 BX471 在同种异体移植排斥反应中可能发挥重要作用，尤其是在与亚治疗剂量的环孢素联合使用时[4]。
- 与野生型对照组相比，CCR1 缺陷小鼠受损肾脏中 CCR1 配体 CCL3 (MIP-1α) 和 CCL5 (RANTES) 的水平较低，这表明白细胞是这些炎症趋化因子的来源，并且在肾脏缺血再灌注损伤模型中存在 CCR1 依赖的白细胞浸润正反馈环路[3]。

C21H24CLFN4O3

434.89

434.152

C, 58.00; H, 5.56; Cl, 8.15; F, 4.37; N, 12.88; O, 11.04

217645-70-0

BX471 hydrochloride; 288262-96-4

512282

White to off-white solid powder

1.3±0.1 g/cm3

593.5±50.0 °C at 760 mmHg

312.8±30.1 °C

0.0±1.7 mmHg at 25°C

1.617

2.77

88.89

2

5

6

30

591

1

O=C(N)NC1=CC(Cl)=CC=C1OCC(N2[C@H](C)CN(CC3=CC=C(F)C=C3)CC2)=O

XQYASZNUFDVMFH-CQSZACIVSA-N

InChI=1S/C21H24ClFN4O3/c1-14-11-26(12-15-2-5-17(23)6-3-15)8-9-27(14)20(28)13-30-19-7-4-16(22)10-18(19)25-21(24)29/h2-7,10,14H,8-9,11-13H2,1H3,(H3,24,25,29)/t14-/m1/s1

[5-chloro-2-[2-[(2R)-4-[(4-fluorophenyl)methyl]-2-methylpiperazin-1-yl]-2-oxoethoxy]phenyl]urea

ZK811752; ZK 811752; ZK-811752; BX471; [5-chloro-2-[2-[(2R)-4-[(4-fluorophenyl)methyl]-2-methylpiperazin-1-yl]-2-oxoethoxy]phenyl]urea; 76K17ZG4ZN; BX 471; BX-471

2934.99.9001

Powder      -20°C    3 years

                     4°C     2 years

In solvent   -80°C    6 months

                  -20°C    1 month

Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)

配方 1 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (5.75 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 40% PEG300 + 5% Tween80 + 45% Saline (这些助溶剂从左到右依次添加，逐一添加), 澄清溶液。
例如，若需制备1 mL的工作液，可将100 μL 25.0 mg/mL澄清DMSO储备液加入到400 μL PEG300中，混匀；然后向上述溶液中加入50 μL Tween-80，混匀；加入450 μL生理盐水定容至1 mL。
*生理盐水的制备：将 0.9 g 氯化钠溶解在 100 mL ddH₂O中，得到澄清溶液。

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配方 2 中的溶解度: ≥ 2.08 mg/mL (4.78 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% (20% SBE-β-CD in Saline) (这些助溶剂从左到右依次添加，逐一添加), 澄清溶液。
例如，若需制备1 mL的工作液，可将 100 μL 20.8 mg/mL澄清DMSO储备液加入900 μL 20% SBE-β-CD生理盐水溶液中，混匀。
*20% SBE-β-CD 生理盐水溶液的制备（4°C，1 周）：将 2 g SBE-β-CD 溶解于 10 mL 生理盐水中，得到澄清溶液。

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配方 3 中的溶解度: ≥ 2.08 mg/mL (4.78 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% Corn Oil (这些助溶剂从左到右依次添加，逐一添加), 澄清溶液。
例如，若需制备1 mL的工作液，可将 100 μL 20.8 mg/mL 澄清 DMSO 储备液加入到 900 μL 玉米油中并混合均匀。

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配方 4 中的溶解度: 5 mg/mL (11.50 mM) in 50% PEG300 50% Saline (这些助溶剂从左到右依次添加，逐一添加), 澄清溶液; 超声助溶.
*生理盐水的制备：将 0.9 g 氯化钠溶解在 100 mL ddH₂O中，得到澄清溶液。

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请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解配方/方案：
1、请先配制澄清的储备液(如：用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液));
2、取适量母液，按从左到右的顺序依次添加助溶剂，澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明，并不一定代表此产品 的实际溶解配方):
10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline);
假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中，混合均匀/澄清；向上述体系中加入50 μL Tween-80，混合均匀/澄清；然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL；
3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例;
4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出，可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶;
5、为保证最佳实验结果，工作液请现配现用！
6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液，请查看说明书或联系我们;
7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。