| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
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| 5mg |
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| 10mg |
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| 25mg |
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| 50mg |
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| Other Sizes |
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| 体外研究 (In Vitro) |
CP21R7(化合物 9)的 IC50 为 1.8 nM,是 GSK-3β 的选择性抑制剂;其针对 PKCα 的 IC50 为 1900 nM[1]。 CP21R7(CP21,3 μM)具有最大活性,可强烈刺激经典 Wnt 信号传导。 CP21 显着提高细胞内 β-连环蛋白的总水平。 BMP4 和 CP21 共同导致 hPSC 分化为中胚层 [2]。
1. 激活人多能干细胞(hPSCs)中的经典Wnt信号通路:CP21R7(一种GSK3β抑制剂)处理可激活hPSCs中β-连环蛋白(β-catenin)启动子活性(荧光素酶实验检测)。实验采用CP21R7的6点3倍系列稀释浓度(10、3、1、0.3、0.1、0.03μM,最后两个浓度数据未显示)。免疫荧光染色显示,CP21R7处理24小时后hPSCs中β-catenin的定位发生改变。实时定量聚合酶链反应(qPCR)证实,CP21R7可上调hPSCs中β-catenin靶基因的表达[2] 2. 诱导hPSCs向中胚层命运分化:CP21R7与BMP4联合处理可快速使hPSCs定向分化为中胚层细胞。免疫荧光染色显示,在分化的前4天,hPSCs中多能性标志物、中胚层标志物和内胚层标志物的表达发生改变[2] 3. 促进血管细胞分化:经CP21R7和BMP4诱导中胚层命运后,后续加入VEGF-A可使hPSCs分化为血管内皮细胞(hPSC-ECs),6天内分化效率超过80%;加入PDGF-BB可使hPSCs分化为血管平滑肌细胞(hPSC-VSMCs),分化效率同样高达80%以上。通过表面标志物(ECs为CD144,VSMCs为CD140b)进行流式细胞术分选,可将细胞纯度提升至99%[2] 4. 分化后血管细胞的功能表征: - hPSC-ECs表达内皮细胞特异性标志物(VE-钙黏蛋白、PECAM1、血管性血友病因子vWF),其中74.52%的细胞表达vWF。体外功能实验显示,该细胞具有单层阻抗对凝血酶的应答能力、跨内皮电阻(TEER)特性、摄取荧光标记的乙酰化低密度脂蛋白(acLDL)的能力;经促炎细胞因子(TNFα、IL1β)刺激后可上调ICAM1的表达,并能介导白细胞(HL60细胞)黏附,且该黏附作用可被抗ICAM1抗体阻断;在基质胶上可形成管状结构,抗血管生成分子可抑制该成管作用[2] - hPSC-VSMCs表达平滑肌细胞特异性标志物(α-平滑肌肌动蛋白SMA、肌球蛋白IIB、SM22a),其中62.08%的细胞表达SMA,92.75%表达肌球蛋白IIB,100%表达SM22a。体外功能实验显示,该细胞经血管收缩试剂刺激后可出现细胞内钙浓度升高,且对U46619具有收缩反应[2] |
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| 体内研究 (In Vivo) |
CP21R7 在体内大鼠骨质疏松模型中显示出功效。
1. CP21R7分化的hPSC-ECs体内功能:将含有hPSC-ECs的纤维蛋白原移植物(单独或与间充质干细胞MSCs、hPSC-VSMCs联合)植入小鼠体内。植入后7天或14天收获移植物,组织学分析(HE染色和人特异性CD31/DAB染色)显示移植物中形成了血管结构,证实分化后的内皮细胞具有体内功能[2] |
| 细胞实验 |
1. β-catenin启动子活性荧光素酶实验:将β-catenin启动子驱动的荧光素酶报告基因质粒转染至hPSCs,转染后用CP21R7的6点3倍系列稀释浓度(10、3、1、0.3、0.1、0.03μM)处理细胞。指定孵育时间后检测荧光素酶活性,评估β-catenin启动子激活情况。实验独立重复5次,结果以均值±标准差(SD)表示[2]
2. 免疫荧光染色实验: - β-catenin定位检测:用CP21R7处理hPSCs 24小时,固定、透化后加入β-catenin一抗和荧光标记二抗孵育,荧光显微镜下采集图像,实验独立重复3次[2] - 细胞谱系标志物检测:hPSCs经CP21R7和BMP4诱导分化,前4天内固定细胞并加入多能性、中胚层、内胚层标志物一抗孵育,荧光显微镜下获取图像,实验独立重复3次[2] - 血管细胞标志物检测:分化后的hPSC-ECs和hPSC-VSMCs固定后,分别加入内皮细胞特异性标志物(VE-钙黏蛋白、PECAM1、vWF)和平滑肌细胞特异性标志物(SMA、肌球蛋白IIB、SM22a)一抗孵育,采集荧光图像并量化阳性细胞比例[2] - ICAM1表达检测:hPSC-ECs经TNFα处理后固定,加入ICAM1一抗和荧光二抗孵育,荧光显微镜下观察ICAM1上调情况[2] 3. 实时定量PCR(qPCR)实验:用CP21R7处理hPSCs,提取总RNA并逆转录为cDNA,使用β-catenin靶基因特异性引物进行qPCR。每个基因设3个生物学重复和技术重复,结果以均值±标准误(SEM)表示,数据来自3次独立实验[2] 4. 流式细胞术实验: - 分化效率分析:分化后的hPSC-ECs和hPSC-VSMCs分别用CD144(内皮细胞标志物)和CD140b(平滑肌细胞标志物)抗体染色,流式细胞术检测阳性细胞比例,hPSC-ECs实验独立重复10次,hPSC-VSMCs实验独立重复16次[2] - ICAM1定量检测:hPSC-ECs经TNFα或IL1β刺激后,用ICAM1抗体染色,流式细胞术量化ICAM1表达水平[2] 5. 白细胞黏附实验:hPSC-ECs经TNFα刺激后,加入HL60细胞共孵育,洗涤后对黏附的HL60细胞进行染色并在显微镜下计数。抗体阻断实验中,hPSC-ECs在TNFα刺激前用抗ICAM1抗体或对照抗体预处理。实验独立重复3次,结果以均值±SD表示[2] 6. 钙成像实验:分化第13天的hPSC-VSMCs负载钙敏感荧光染料,加入血管收缩试剂后,检测细胞内钙水平变化(相对荧光单位RFU的倍变化),在50秒(峰值)时记录数据。数据来自3次独立实验,采用Student’s t检验分析[2] 7. 收缩功能实验:UASMCs和hPSC-VSMCs经U46619处理48小时后,评估收缩功能,单次实验中对照组设1孔,实验组设2孔[2] 8. 成管实验:hPSC-ECs单独或与原代人脑血管周细胞(hBVPs)共同接种于基质胶上,孵育24小时后观察并拍摄成管情况,hPSC-ECs单独成管实验独立重复10次,与hBVPs共培养实验独立重复3次。抑制实验中加入抗血管生成分子,量化其对成管作用的抑制效应,数据来自3次独立实验[2] |
| 动物实验 |
1. 纤维蛋白原移植物体内植入: - 移植物制备:将hPSC-ECs与纤维蛋白原混合制备移植物;部分移植物与MSCs或hPSC-VSMCs联合使用。HUVECs + MSCs作为对照组[2] - 动物模型:选择SCID小鼠或NOD SCID小鼠作为实验动物[2] - 植入程序:将移植物植入小鼠体内,每组5只小鼠,每只小鼠植入2个移植物(每组10个移植物)[2] - 样本采集和分析:分别于植入后7天或14天采集移植物。组织经固定、石蜡包埋、切片后,进行HE染色和人特异性CD31/DAB染色,以观察血管结构形成[2] 2. 大鼠骨质疏松模型实验:未提供涉及CP21R7的大鼠骨质疏松模型实验的详细方案;仅提及化合物34的疗效[1] |
| 参考文献 | |
| 其他信息 |
1. 背景:GSK-3β抑制剂具有潜在的治疗应用价值。一系列高效且高选择性的马来酰亚胺类GSK-3β抑制剂已被开发出来,其中化合物34(与CP21R7同属一个系列)对GSK-3β的IC50值为0.6 nM,对其他激酶的选择性超过100倍[1]
2. 背景:人类多能干细胞(hPSCs)需要分化为功能性成体细胞类型,用于体外疾病建模和临床应用。GSK3抑制联合BMP4处理是hPSCs快速高效分化为血管内皮细胞和平滑肌细胞的关键步骤[2] 3. 作用机制:CP21R7作为GSK3β抑制剂,通过调节β-catenin活性激活经典Wnt信号通路。这种激活,结合 BMP4 处理,可使 hPSCs 分化为中胚层谱系,并在 VEGF-A 刺激下进一步分化为血管内皮细胞,或在 PDGF-BB 刺激下分化为血管平滑肌细胞 [2] 4. 治疗潜力:CP21R7 分化的 hPSC-ECs 和 hPSC-VSMCs 在整体转录组和代谢组学特征方面与体内对应细胞高度相似,并显示出相关的体外和体内功能。这些细胞可用于构建人类血管疾病的真实模型 [2] |
| 分子式 |
C19H15N3O2
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|---|---|---|
| 分子量 |
317.34
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| 精确质量 |
317.116
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| CAS号 |
125314-13-8
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| 相关CAS号 |
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| PubChem CID |
5327711
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| 外观&性状 |
Yellow to orange solid powder
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| 密度 |
1.4±0.1 g/cm3
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| 沸点 |
627.4±55.0 °C at 760 mmHg
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| 闪点 |
333.2±31.5 °C
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| 蒸汽压 |
0.0±1.8 mmHg at 25°C
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| 折射率 |
1.714
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| LogP |
2.4
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| tPSA |
77.1
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| 氢键供体(HBD)数目 |
2
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| 氢键受体(HBA)数目 |
3
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| 可旋转键数目(RBC) |
2
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| 重原子数目 |
24
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| 分子复杂度/Complexity |
585
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| 定义原子立体中心数目 |
0
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| InChi Key |
RGTAEYDIDMGJLX-UHFFFAOYSA-N
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| InChi Code |
InChI=1S/C19H15N3O2/c1-22-10-14(13-7-2-3-8-15(13)22)17-16(18(23)21-19(17)24)11-5-4-6-12(20)9-11/h2-10H,20H2,1H3,(H,21,23,24)
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| 化学名 |
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| 别名 |
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| HS Tariff Code |
2934.99.9001
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| 存储方式 |
Powder -20°C 3 years 4°C 2 years In solvent -80°C 6 months -20°C 1 month |
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| 运输条件 |
Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)
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| 溶解度 (体外实验) |
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| 溶解度 (体内实验) |
配方 1 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (7.88 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 40% PEG300 +5% Tween-80 + 45% Saline (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。
例如,若需制备1 mL的工作液,可将100 μL 25.0 mg/mL澄清DMSO储备液加入到400 μL PEG300中,混匀;然后向上述溶液中加入50 μL Tween-80+,混匀;加入450 μL生理盐水定容至1 mL。 *生理盐水的制备:将 0.9 g 氯化钠溶解在 100 mL ddH₂O中,得到澄清溶液。 请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解配方/方案: 1、请先配制澄清的储备液(如:用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液)); 2、取适量母液,按从左到右的顺序依次添加助溶剂,澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明,并不一定代表此产品 的实际溶解配方): 10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline); 假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中,混合均匀/澄清;向上述体系中加入50 μL Tween-80,混合均匀/澄清;然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL; 3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例; 4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出,可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶; 5、为保证最佳实验结果,工作液请现配现用! 6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液,请查看说明书或联系我们; 7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。 |
| 制备储备液 | 1 mg | 5 mg | 10 mg | |
| 1 mM | 3.1512 mL | 15.7560 mL | 31.5119 mL | |
| 5 mM | 0.6302 mL | 3.1512 mL | 6.3024 mL | |
| 10 mM | 0.3151 mL | 1.5756 mL | 3.1512 mL |
1、根据实验需要选择合适的溶剂配制储备液 (母液):对于大多数产品,InvivoChem推荐用DMSO配置母液 (比如:5、10、20mM或者10、20、50 mg/mL浓度),个别水溶性高的产品可直接溶于水。产品在DMSO 、水或其他溶剂中的具体溶解度详见上”溶解度 (体外)”部分;
2、如果您找不到您想要的溶解度信息,或者很难将产品溶解在溶液中,请联系我们;
3、建议使用下列计算器进行相关计算(摩尔浓度计算器、稀释计算器、分子量计算器、重组计算器等);
4、母液配好之后,将其分装到常规用量,并储存在-20°C或-80°C,尽量减少反复冻融循环。
计算结果:
工作液浓度: mg/mL;
DMSO母液配制方法: mg 药物溶于 μL DMSO溶液(母液浓度 mg/mL)。如该浓度超过该批次药物DMSO溶解度,请首先与我们联系。
体内配方配制方法:取 μL DMSO母液,加入 μL PEG300,混匀澄清后加入μL Tween 80,混匀澄清后加入 μL ddH2O,混匀澄清。
(1) 请确保溶液澄清之后,再加入下一种溶剂 (助溶剂) 。可利用涡旋、超声或水浴加热等方法助溶;
(2) 一定要按顺序加入溶剂 (助溶剂) 。
Canonical Wnt activation by GSK3ß inhibitors and mesoderm induction.Nat Cell Biol.2015 Aug;17(8):994-1003. th> |
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VEGF and PDGF-BB-mediated differentiation of hPSCs into vascular endothelial or vascular smooth muscle cells.Nat Cell Biol.2015 Aug;17(8):994-1003. td> |
In vitrocharacterization of hPSC-ECs and hPSC-VSMCs.Nat Cell Biol.2015 Aug;17(8):994-1003. td> |
Global transcriptome and metabolomic analyses confirm vascular cell identity of differentiated hPSCs.Nat Cell Biol.2015 Aug;17(8):994-1003. th> |
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Co-culture experiments andin vivocharacterization of hPSC-ECs.Nat Cell Biol.2015 Aug;17(8):994-1003. td> |