| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
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| 1mg |
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| 5mg |
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| 10mg |
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| Other Sizes |
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| 靶点 |
Androgen receptor; metabolite of testosterone; oxidized testosterone
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| 体外研究 (In Vitro) |
在一些硬骨鱼中,11-酮睾酮 (11-KT) 是最强大的雄激素,并且不可芳香化。与 11-酮睾酮(10 和 100 μM)体外培养五天后,肝外植体和卵巢外植体的培养基中睾酮和 17β-雌二醇浓度增加;肝外植体培养基中卵黄蛋白原的浓度也增加[1]。
HSD11B2由SF-1诱导并参与11-KT生成[1] 人卵巢颗粒细胞瘤来源的KGN细胞在基础条件下类固醇生成能力较弱。但通过感染表达SF-1及其辅激活因子的腺病毒,可使其转化为能产生多种类固醇激素的细胞。为研究这一转化过程中的基因表达变化,我们采用DNA微阵列技术对比了转入GFP或SF-1的KGN细胞。SF-1的引入诱导了包括CYP11A1、HSD3B2、CYP17A1和CYP19A1等已知SF-1靶基因在内的多个类固醇合成酶基因表达(附表2)。除这些基因外,HSD11B2作为强效SF-1诱导候选基因(附表2),在GFP转导细胞中几乎检测不到(图1A、B)。Q-PCR和免疫印迹分析证实,SF-1的引入显著诱导了HSD11B2 mRNA和蛋白表达(图1A、B),与微阵列数据一致。既往研究表明,在小鼠性腺中HSD11B2与CYP11B1共同参与睾酮向11-KT的转化(附图1),体外实验也证实其能催化肾上腺雄激素转化。微阵列分析提示CYP11B1与其他参与睾酮和E2合成的类固醇生成基因一样,也是SF-1诱导基因(图1C、附表2及附图1)。实际上,SF-1不仅能诱导睾酮和E2的产生,还能促进CYP11B1表达及11-KT生成(图1C、D)。 为验证HSD11B2在人源类固醇生成细胞中催化11-KT合成的作用,我们在人肾上腺皮质H295R细胞中异位表达该基因。H295R细胞虽表达CYP11B1和其他睾酮合成相关酶(附图2),但内源性HSD11B2几乎不可检测(图2A)。尽管该细胞能较高水平产生睾酮,但其向11-KT的转化率极低(图2C、D)。瞬时转染HSD11B2表达载体(图2B)后,实验组11-KT产量较对照组显著增加(图2D),而两组睾酮浓度无差异(图2C)。这些结果表明人源HSD11B2的表达可能是类固醇生成细胞中11-KT合成的重要调控因子。 11-KT体外处理效应[2] 卵巢组织学观察[2] 通过组织学观察证实体外培养样本均发育至II期(图6)。 肝外植体中era、erb、ar、lpl、cyp19a1、Vtg基因表达谱[2] 参考引物筛选显示β-actin最适合作为内参(BestKeeper中SD=0.22;Delta CT中SD=0.57;Normfinder中SD=0.052;P<0.05,表1)。cyp19a1在100μM组的表达量是对照组的6.4倍(P=0.001),是10μM组的3倍(P=0.002)(图7A)。era在100μM组的表达量较对照组升高2.2倍(P=0.033),较10μM组高1.3倍(P=0.108)(图7B)。erb表达随11-KT浓度增加略有上升,但组间无统计学差异(P=0.838,图7C)。实验组ar和lpl表达均显著高于对照组(P=0.017;P≤0.001),但两实验组间无差异(P=0.784;P=0.999)(图7D、E)。ar表达在10μM和100μM组分别是对照组的1.93倍(P=0.017)和2.18倍(P=0.019)(图7D)。lpl表达在10μM和100μM组分别较对照组高1.3倍(P=0.001)和1.5倍(P≤0.001)(图7E)。值得注意的是,11-KT对vtg表达具有显著促进作用:100μM组表达量是10μM组的30倍(P=0.002),是对照组的80倍(P=0.01)(图7F)。 肝外植体培养液中T、E2和Vtg浓度变化[2] 添加100μM 11-KT的肝外植体培养5天后,培养液中T和E2浓度显著增加。100μM组T浓度(151.30±73.50 ng/mL)高于10μM组(14.14±10.90 ng/mL,P=0.058)和对照组(0.01±0.00 ng/mL,P=0.026)(图8A)。100μM组E2浓度(96.88±42.63 pg/mL)是10μM组(16.61±6.40 pg/mL)的6倍(P=0.002),是对照组(1.59±0.69 pg/mL)的60倍(P=0.001)(图8B)。Vtg浓度随11-KT浓度升高呈上升趋势(P=0.035),100μM组(0.18±0.00 ng/mL)分别是10μM组(0.10±0.02 ng/mL)和对照组(0.03±0.01 ng/mL)的1.8倍(P=0.026)和6倍(图8C)。 卵巢外植体中foxl2、cyp19a1、era、erb、ar、Vtgr基因表达谱[2] 经含11-KT培养基培养5天后,仅era在实验组的表达较对照组发生显著变化(P=0.005,图9C)。foxl2、cyp19a1和erb表达虽呈浓度依赖性上升趋势,但组间无统计学差异(P=0.095,图9A;P=0.214,图9B;P=0.838,图9D)。 卵巢外植体培养液中T和E2浓度变化[2] 添加11-KT后,卵巢组织培养液中T和E2浓度均升高。实验组T浓度显著高于对照组(0.02±0.01 ng/mL,P=0.001),但10μM组(140.75±28.87 ng/mL)与100μM组(40.27±40.54 ng/mL)无显著差异(P=0.058,图10A)。100μM组E2浓度(66.36±22.79 pg/mL)分别是10μM组(13.77±5.63 pg/mL)和对照组(2.17±1.63 pg/mL)的4.8倍(P=0.024)和33倍(P=0.002)(图10B)。 |
| 体内研究 (In Vivo) |
将含有 11-酮睾酮(5 或 25 mg/kg)的硅橡胶条植入卵黄发生前培养的小鲟(Acipenser ruthenus)体内,历时 30 天。没有证据表明性逆转或卵巢男性化。 11-酮睾酮促进扩散依赖性小体卵巢发育[1]。
11-酮睾酮(111-KT)是一种非芳香化的雄激素,是几种硬骨鱼中最有效的雄激素。有报道称,少数雌鱼在卵黄沉积期前血清中11-KT浓度较高且急剧升高。本研究旨在分析11-KT在体外和体内对黄颡鱼卵巢发育、相关基因表达水平、卵黄蛋白原蛋白(Vtg)合成和血清性类固醇浓度的影响。11-KT(5或25 mg/kg)硅橡胶条体内植入30天。未观察到卵巢男性化或性别逆转。组织学分析显示,11-KT以剂量依赖的方式促进小体卵巢发育。Vtg和睾酮(T)显著升高,17β-雌二醇(E2)显著降低,各组间差异无统计学意义。肝脏雄激素受体(ar)、vtg和脂蛋白脂肪酶(lpl)基因表达显著升高。而11-KT对卵巢中foxl2和cyp19a1的表达没有影响。体外11-KT (10 μM和100 μM)培养5 d后,肝脏和卵巢外植体培养基中T和E2浓度均升高;肝脏外植体培养基中Vtg的浓度也增加。肝组织中ar、era、vtg和lpl的表达显著升高。而在体外培养的卵巢外植体中,只有era的表达显著增加。总之,这些结果表明,11-KT诱导卵巢发育,以及Vtg和脂质合成,并且可能是促进卵黄前小体肝脏中Vtg合成启动的重要因素。[2] 11-KT在生殖腺中产生,是人类的主要雄激素之一[1] 为了阐明11-KT的合成途径,我们研究了人类性腺中CYP11B1和HSD11B2的表达(图3,A和B)。Q-PCR和Western blot分析显示,这两个基因在睾丸和卵巢中的mRNA和蛋白水平均可检测到(图3,A和B)。免疫组织化学分析显示,这两种蛋白都定位于睾丸间质细胞和卵巢卵膜细胞,尽管HSD11B2在卵巢颗粒细胞的一些群体中也可检测到(图3C)。这些结果强烈提示11-KT在睾丸间质细胞和卵巢卵泡细胞中产生。为了证实这一假设,我们研究了人类间质细胞中11-KT的产生。为了支持免疫组织化学分析,间质细胞表达CYP11B1和HSD11B2基因(补充图3A)。在基础条件下,它们可以产生孕酮、睾酮和11-KT(图3D和补充图3B)。cAMP治疗适度增加了这些类固醇激素的产生。 然后,我们测量了男女血浆中11-KT、睾酮和E2的浓度(图3,E-G)。男性的睾酮水平大约是女性的22倍,而11-KT水平在两性之间是相似的(图3,E和F)。值得注意的是,在女性中,11-KT浓度与睾酮浓度相似,比E2浓度高约5倍(图3H)。在KGN细胞中,浓度超过10−9M时,人ar介导的转激活显著增加了11-KT(图4)。这一水平低于其他雄激素的诱导水平,尽管DHT和睾酮分别在10−8M和10−7M时将反激活提高到相似的水平。这些结果提示11-KT可能作为一种主要的雄激素在人体中发挥一定的作用。 11-KT不能转化为雌激素激素[1] 在女性个体中,睾酮既是雄激素又是雌激素的前体。为了确定11-KT是否是雌激素的前体,我们在人乳腺癌源性MCF-7细胞中使用含有ERE的报告质粒进行了荧光素酶测定,MCF-7细胞内源性表达芳香化酶和ERα。与E2相比,雄激素在较低浓度(10−11M和10−10M)下对荧光素酶活性没有影响(图5A)。然而,睾酮在高浓度和10−7M时激活er依赖性转录,睾酮作为E2有效。这种活性被芳香化酶抑制剂法唑完全抑制(图5B)。DHT在10−7M时以不依赖芳香酶的方式弱激活er介导的转激活。相比之下,即使在10−6M时,11-KT对er介导的交易激活没有影响(图5A;数据未显示)。这些结果表明,11-KT是一种不可芳香化的雄激素,不会转化为激活内质网介导的转激活的化合物。 |
| 酶活实验 |
酶免疫测定(EIAs)和液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)测定[1]
采用竞争EIA法测定KGN、H295R和人间质细胞培养液中睾酮、11-KT和E2的浓度。每个样品用EIA缓冲液稀释,使用孕酮、睾酮、11-KT和E2 EIA试剂盒在微孔板读取器中按照制造商的说明进行分析。另一方面,通过LC-MS/MS测定人血浆中类固醇激素的浓度,以便对临床样品进行最佳定量。人血浆样品的处理和定量睾酮,11-KT和E2的LC-MS/MS方法基于上述方法。 性类固醇激素和Vtg的测定 [2] 约0.8 mL血浆用于性类固醇激素和Vtg浓度测定。根据制造商的说明,使用卵黄蛋白原酶联免疫吸附测定试剂盒测定Vtg。睾酮放射免疫测定试剂盒测定T。该方法对t的最低检测限为0.02 ng/ML,所有抗体与密切相关的类固醇(如双氢睾酮)的交叉反应性<0.1%,为1.1 × 10−2%;17β-雌二醇,2.1 × 10−2%;雌三醇,6.2 × 10 - 15%;黄体酮,3.2 × 10 - 2%;11-KT, 1.2 × 10−2%。E2采用化学发光免疫法测定,使用定量测定试剂盒17β-雌二醇。E2的最低检测限<4.0 pg/ml。生产商提供的抗体交叉反应性如下:雌三醇<0.5%;孕酮< 1.5%;睾酮<0.01%。用logit (%B/B0)与对数浓度的线性模型建立标准曲线。所有样品一式两份分析。Vtg、T和E2的测定内平均方差分别为8.38、5.9和6.4%,均在可接受水平之内。 |
| 细胞实验 |
增殖试验[1]
MCF-7细胞或ar引入的细胞接种于DMEM/F-12中,DMEM/F-12中添加10%或2%的木炭/葡聚糖剥离- fbs,接种于96孔板中,1 × 103个细胞/孔。在播种后24小时,用含有不同浓度DHT、睾酮、11-KT或E2的培养基处理细胞。孵育后6天(亲代细胞)或9天(ar导入细胞),按照制造商的说明使用CellTiter 96水溶液试剂盒评估细胞增殖。为了评估芳香化酶抑制剂法唑或内质网拮抗剂氟维司汀对MCF-7细胞生长的影响,在有或没有这些药物的情况下进行了增殖试验。 实验2:v对肝脏和卵巢外植体靶基因表达、性类固醇浓度和Vtg合成的体外影响[2] 用40 μL乙醇(终孵育体积的0.16%)溶出1000 μM (3000 ng/mL) 11-KT(MW = 302.408)的原液,加入5 mL的DMEM/F12。 选择3只28月龄雌幼鱼,在胚胎发生前进行内镜检测。用400ppm的MS222麻醉后,将小蝌蚪短暂浸泡在75%的乙醇中,然后在无菌条件下切除卵巢和肝脏。从卵巢中心部分一贯切除的部分固定在Bouin溶液中进行组织学分析。脂肪组织去除后,剩余卵巢组织和肝脏分别用冷PBS (1X, PH = 7.4)洗涤,在培养基(DMEM/F12, 1:1, 1X,不含酚红)中切成1 cm3的碎片。采用6孔Costar培养板,片段在2.5 mL培养基中25℃孵育5天。每个处理和每个个体进行三次重复孵育。培养基由DMEM/F12 (1:1, 1X,无酚红)、1%青霉素-链霉素溶液、20%胎牛血清和0、10、100 μM 11-KT(0、30或300 ng/mL)组成。在培养结束时,外植体在液氮中快速冷冻,并在- 80°C保存直至分析。从每个培养皿中收集培养基,测定T、E2和Vtg的浓度。 |
| 动物实验 |
动物和合成11-KT粉末[2]
在这些实验中,11-KT粉末由军事医学科学院合成,方法是利用硼氢化钠催化反应将肾上腺酮的C17酮基还原为羟基。以标准11-KT为对照,采用高效液相色谱法(HPLC)检测合成的11-KT的纯度和纯度,结果为99.9%,然后储存于4℃。 实验1:11-酮睾酮(11-KT)对卵巢发育、靶基因表达、性激素浓度和卵黄蛋白原合成的体内影响[2] 缓释11-KT硅胶条的制备[2] 将干燥的11-KT与未聚合的医用弹性体基质和凝固剂硅胶MDX4-4210混合并充分均质。混合均匀后,将糊状物干燥并加工成硅胶条(直径1.5 mm,长度30 mm)。每条硅胶条含25 mg 11-KT。所有硅胶条均用铝箔包裹,并在4°C下保存直至使用。 动物和11-KT植入[2] 2015年8月随机收集28月龄的雌性鲟鱼。经麻醉下内窥镜检测后,选取18尾卵黄生成前期的雌性鲟鱼进行植入,并随机分为三组:一组为对照组(355.30 ± 27.93 g,n = 6),两组为治疗组,分别为低剂量组(5 mg/kg,375.12 ± 50.37 g,n = 6)和高剂量组(25 mg/kg,405.83 ± 49.84 g,n = 6)。各组间无显著差异(P = 0.142)。每日饲喂商业标准饲料。所有鲟鱼均用400 ppm MS222麻醉后,在其腹部正中线做一小切口。在治疗组中,将适量的11-KT硅胶条切割后植入,以达到相应的剂量(分别为5或25 mg/kg)。在对照组中,以与治疗组相同的方式植入不含11-KT的硅胶条。术后,在切口处涂抹红霉素软膏以预防伤口感染。然后,将幼鲟转移至室内圆柱形水箱(1 m³)中,并在流动水中饲养30天。水箱中的水温范围为16.8至21.4°C。 |
| 参考文献 | |
| 其他信息 |
11-氧代睾酮是一种3-氧代Δ⁴类固醇,是睾酮在11位上带有一个额外的氧代取代基。它是一种雄激素,也是海洋异生物质和人体代谢产物。它是一种3-氧代Δ⁴类固醇、11-氧代类固醇、雄甾烷类化合物和17β-羟基类固醇。它在功能上与睾酮相关。它来源于雄甾烷的氢化物。
背景:11-酮睾酮(11-KT)是一类新型活性雄激素。然而,其在人体内的合成细节仍不清楚。目的:本研究旨在阐明11-KT在人体内的产生和性质。设计、参与者和方法:本研究检测了人性腺中细胞色素P450和11β-羟类固醇脱氢酶1型和2型(参与11-酮睾酮合成的关键酶)的表达。同时,研究了Leydig细胞中11-酮睾酮的生成情况。此外,还测量了10名育龄女性和10名育龄男性血浆中睾酮和11-酮睾酮的浓度。最后,利用乳腺癌来源的MCF-7细胞研究了11-酮睾酮的特性。结果:在Leydig细胞和卵泡膜细胞中均检测到了细胞色素P450和11β-羟类固醇脱氢酶1型和2型。Leydig细胞能够生成11-酮睾酮,且男性和女性血浆中11-酮睾酮的水平都相对较高。尽管男性的睾酮水平比女性高20倍以上,但血浆中11-酮睾酮的水平并未表现出性别差异。值得注意的是,女性体内睾酮和11-酮睾酮(11-KT)的水平相似。在荧光素酶报告系统中,11-KT激活了人雄激素受体介导的转录激活。相反,在表达芳香化酶的MCF-7细胞中,11-KT不能激活雌激素受体介导的转录激活,而睾酮在转化为雌激素后可以。11-KT不影响MCF-7细胞中雌激素/雌激素受体介导的细胞增殖。此外,当将雄激素受体转染到MCF-7细胞中时,11-KT显著抑制了细胞增殖。结论:本研究表明,11-KT在性腺中产生,是人体的主要雄激素之一。它可能是一种非芳香化雄激素。[1] 总之,我们证明了11-KT是一种主要的雄激素,并在性腺中产生。由于雄激素对生殖和生理功能至关重要,其过量或不足通常会导致疾病发生。因此,11-酮睾酮(11-KT)可能与此类疾病有关,并可能成为治疗此类疾病的新靶点。此外,它可能为阐明一些模糊的雄激素受体(AR)介导的现象提供新的见解。[1] 总之,我们报道了11-KT在体内诱导卵巢发育,而不会引起卵巢雄性化或性别逆转,并且在体内和体外均能促进卵黄蛋白原(Vtg)和脂质的合成。据我们所知,这是首次报道11-KT对鲟鱼卵黄生成前小体发育的影响。Hamlin等人通过检测自然繁殖季节西伯利亚鲟鱼性腺发育阶段的睾酮(T)、雌二醇(E2)和11-KT浓度,发现11-KT对鲟鱼卵黄生成前小体发育有显著影响。据报道,雌性鲟鱼体内11-酮睾酮(11-KT)水平从卵黄生成前期开始升高,并在生殖泡期达到峰值,同时雌二醇(E2)浓度也相应升高。在阿穆尔鲟(A. schrenckii)卵黄生成前期雌性鲟鱼中,血清11-KT浓度较低,但在卵黄生成初期升高,并在E2浓度达到峰值之前达到峰值。因此,在鲟鱼中,11-KT似乎是卵黄生成前期启动卵黄蛋白原(Vtg)合成的重要因子,其作用机制可能通过Ar和Era信号通路激活E2分泌。然而,要深入了解这些通路,还需要进行更多研究,例如RNA测序或microRNA调控研究,以阐明其中涉及的分子机制。[2] |
| 分子式 |
C19H26O3
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|---|---|
| 分子量 |
302.41
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| 精确质量 |
302.188
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| CAS号 |
564-35-2
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| PubChem CID |
5282365
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| 外观&性状 |
White to off-white solid powder
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| 密度 |
1.2±0.1 g/cm3
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| 沸点 |
476.8±45.0 °C at 760 mmHg
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| 闪点 |
256.3±25.2 °C
|
| 蒸汽压 |
0.0±2.7 mmHg at 25°C
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| 折射率 |
1.569
|
| LogP |
1.67
|
| tPSA |
54.37
|
| 氢键供体(HBD)数目 |
1
|
| 氢键受体(HBA)数目 |
3
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| 可旋转键数目(RBC) |
0
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| 重原子数目 |
22
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| 分子复杂度/Complexity |
577
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| 定义原子立体中心数目 |
6
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| SMILES |
C[C@]12CCC(=O)C=C1CC[C@@H]3[C@@H]2C(=O)C[C@]4([C@H]3CC[C@@H]4O)C
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| InChi Key |
WTPMRQZHJLJSBO-XQALERBDSA-N
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| InChi Code |
InChI=1S/C19H26O3/c1-18-8-7-12(20)9-11(18)3-4-13-14-5-6-16(22)19(14,2)10-15(21)17(13)18/h9,13-14,16-17,22H,3-8,10H2,1-2H3/t13-,14-,16-,17+,18-,19-/m0/s1
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| 化学名 |
(8S,9S,10R,13S,14S,17S)-17-hydroxy-10,13-dimethyl-2,6,7,8,9,12,14,15,16,17-decahydro-1H-cyclopenta[a]phenanthrene-3,11-dione
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| 别名 |
11-Ketotestosterone; 11-Oxotestosterone; 11-Keto-testosterone; UNII-KF38W1A85U; KF38W1A85U; 17beta-Hydroxyandrost-4-ene-3,11-dione; Androst-4-ene-3,11-dione, 17-hydroxy-, (17beta)-; ...; 564-35-2;
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| HS Tariff Code |
2934.99.9001
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| 存储方式 |
Powder -20°C 3 years 4°C 2 years In solvent -80°C 6 months -20°C 1 month 注意: 请将本产品存放在密封且受保护的环境中,避免吸湿/受潮。 |
| 运输条件 |
Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)
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| 溶解度 (体外实验) |
DMSO: 100 mg/mL (330.68 mM)
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|---|---|
| 溶解度 (体内实验) |
配方 1 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (8.27 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 40% PEG300 + 5% Tween80 + 45% Saline (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。
例如,若需制备1 mL的工作液,可将100 μL 25.0 mg/mL澄清DMSO储备液加入到400 μL PEG300中,混匀;然后向上述溶液中加入50 μL Tween-80,混匀;加入450 μL生理盐水定容至1 mL。 *生理盐水的制备:将 0.9 g 氯化钠溶解在 100 mL ddH₂O中,得到澄清溶液。 配方 2 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (8.27 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% (20% SBE-β-CD in Saline) (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。 例如,若需制备1 mL的工作液,可将 100 μL 25.0 mg/mL澄清DMSO储备液加入900 μL 20% SBE-β-CD生理盐水溶液中,混匀。 *20% SBE-β-CD 生理盐水溶液的制备(4°C,1 周):将 2 g SBE-β-CD 溶解于 10 mL 生理盐水中,得到澄清溶液。 View More
配方 3 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (8.27 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% Corn Oil (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。 1、请先配制澄清的储备液(如:用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液)); 2、取适量母液,按从左到右的顺序依次添加助溶剂,澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明,并不一定代表此产品 的实际溶解配方): 10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline); 假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中,混合均匀/澄清;向上述体系中加入50 μL Tween-80,混合均匀/澄清;然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL; 3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例; 4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出,可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶; 5、为保证最佳实验结果,工作液请现配现用! 6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液,请查看说明书或联系我们; 7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。 |
| 制备储备液 | 1 mg | 5 mg | 10 mg | |
| 1 mM | 3.3068 mL | 16.5338 mL | 33.0677 mL | |
| 5 mM | 0.6614 mL | 3.3068 mL | 6.6135 mL | |
| 10 mM | 0.3307 mL | 1.6534 mL | 3.3068 mL |
1、根据实验需要选择合适的溶剂配制储备液 (母液):对于大多数产品,InvivoChem推荐用DMSO配置母液 (比如:5、10、20mM或者10、20、50 mg/mL浓度),个别水溶性高的产品可直接溶于水。产品在DMSO 、水或其他溶剂中的具体溶解度详见上”溶解度 (体外)”部分;
2、如果您找不到您想要的溶解度信息,或者很难将产品溶解在溶液中,请联系我们;
3、建议使用下列计算器进行相关计算(摩尔浓度计算器、稀释计算器、分子量计算器、重组计算器等);
4、母液配好之后,将其分装到常规用量,并储存在-20°C或-80°C,尽量减少反复冻融循环。
计算结果:
工作液浓度: mg/mL;
DMSO母液配制方法: mg 药物溶于 μL DMSO溶液(母液浓度 mg/mL)。如该浓度超过该批次药物DMSO溶解度,请首先与我们联系。
体内配方配制方法:取 μL DMSO母液,加入 μL PEG300,混匀澄清后加入μL Tween 80,混匀澄清后加入 μL ddH2O,混匀澄清。
(1) 请确保溶液澄清之后,再加入下一种溶剂 (助溶剂) 。可利用涡旋、超声或水浴加热等方法助溶;
(2) 一定要按顺序加入溶剂 (助溶剂) 。