AG-494 (Tyrphostin AG-494)

EGFR tyrosine kinase (IC50=0.7 μM).

AG 494 抑制 DHER-14 细胞中 EGF 依赖性 DNA 合成和 Cdk2 激活 [2]。 AG-494 可以显着降低并阻止 H2O2 处理的细胞以及二氧化硅刺激的细胞中 NF-kB 的激活 [4]。 BMP9 产生的 ALP 活性被 AG-494（3-9 μM；5-7 天）以剂量依赖性方式抑制 [5]。

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我们之前已经证明，EGFR激酶选择性酪氨酸磷酸酶AG494不能抑制完整细胞中的EGFR激酶。然而，AG494被证明可以抑制EGF或血清诱导的细胞增殖（Osherov等人，J.Biol.Chem.268（1993）11134-11142）。在这篇初步通讯中，我们表明AG 494及其类似物AG 490和AG 555阻断了Cdk2的激活。相比之下，AG 1478是一种更具选择性的EGFR激酶阻断剂，在完整细胞中也具有EGFR激酶阻断活性，但却不能做到这一点。即使在Cdk2活化最大的EGF添加后20小时添加，AG 494也对Cdk2活化具有完全的抑制活性。对Cdk2活化的抑制活性与其DNA合成抑制活性相似，强烈表明其靶点是Cdk2活化涉及的分子机制之一。AG 494及其类似物可能成为开发针对细胞周期机制的药物的有用先导化合物。[2]

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BMP9诱导的成骨分化可被EGFR抑制剂有效阻断[4]
表皮生长因子通过激活其酪氨酸激酶受体EGFR（又名HER1）启动下游事件。我们试图确定常见的EGFR抑制剂是否会对BMP9诱导的MSCs成骨分化产生任何影响。我们测试了四种EGFR抑制剂，AG494、AG1478、厄洛替尼和吉非替尼，发现它们都以剂量依赖的方式抑制BMP9诱导的ALP活性（图3A）。在四种测试的抑制剂中，厄洛替尼和吉非替尼被临床用作抗癌药物，在抑制BMP9诱导的ALP活性方面，它们被证明比AG494和AG1478略有效（图3A和B）。因此，这些体外研究结果表明，EGFR信号传导可能在BMP9调节的成骨分化中发挥重要作用，尽管这些抑制剂也可能靶向其他酪氨酸激酶。

抑制自磷酸化[2]
在4°C下，将膜（2μg/次测定）与EGF（50 nM）在50 mM HEPES（pH 7.4）、125 mM NaCl中预孵育15分钟。通过向12μl反应混合物中加入8μl膜来启动该测定，该反应混合物含有50 mM HEPES（pH 7.4）、125 mM NaCl、2μM ATP（=2 K M最终）、1μCi[32P]γ-ATP、4 mM MnCl2、24 mM MgCl2和4μl溶于10%Me2SO/45%乙醇/45%DDW（双蒸馏水）的tyrphostin。该测定在4°C下进行，30秒后通过加入8μl沸腾的SDS-PAGE样品缓冲液终止。在6%SDS-PAGE上分离蛋白质，并进行放射自显影。然后可以检测到受体分子量中单个EGF诱导的32P标记带。通过密度测定法对该条带进行扫描和定量。使用E-Z拟合程序计算IC50值。
所有反应均在V形96孔板上使用多吸管快速进行。反应在30秒内均呈线性。控制放射自显影的曝光时间，使胶片曝光呈线性。基础EGF非依赖性活性不超过EGF激活的HER-1/EGF受体自磷酸化的5%。pp60c-src活性的抑制基本上是通过使用DHER-14细胞进行的，如前所述，使用变性烯醇化酶作为底物。如Schechter等人所述，对小麦胚凝集素（WGA）纯化的胰岛素受体的自磷酸化进行抑制。使用由NIH-3T3细胞制备的膜，使用如HER-1所述的用人HER-2/Neu受体转染的已发表程序，对HER-2/Nue受体的自磷酸化进行抑制。

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免疫沉淀和Cdk2激酶测定[2]
如所述，DHER-14细胞在DMEM+10%小牛血清的Costar 6孔培养皿中生长融合48小时。细胞被饥饿3天。在最后24小时内，细胞被各种有丝分裂原（20 nM EGF；50 ng/ml TPA佛波酯）或50μM溶血磷脂酸（LPA）激活不同时间。按照每个实验的描述，用tyrphostins孵育细胞。细胞在PBS中洗涤一次，然后在冰上用1 ml/孔冷IP缓冲液（50 mM HEPES、250 mM NaCl、5 mM DTT、0.25%NP-40、10 mM NaF和蛋白酶抑制剂）裂解。将裂解物在冰上孵育30分钟，然后在微量离心机中离心14000×g 15分钟。转移上清液，在饱和浓度为1μg/eppendorf的抗Cdk2抗体存在下孵育2小时。将免疫复合物收集在蛋白A琼脂糖珠上（每eppendorf 7.5μl包装体积），并在IP缓冲液中洗涤3次。然后在激酶缓冲液（50 mM HEPES、10 mM MgCl、1 mM DTT、1μM冷ATP）中第四次洗涤沉淀物。用细孔Hamilton注射器从珠粒中吸出所有缓冲液，每次测定加入40μl/eppendorf反应混合物引发激酶反应，该混合物含有激酶缓冲液和1μCi/测定[γ-32P]ATP和2.5μg组蛋白H1（新鲜制备）。 反应在30°C下进行20分钟，然后通过加入12.5μl/测定SDS-PAGE样品缓冲液×4来停止。样品在10%SDS-PAGE凝胶上分离，并在-70°C下暴露于薄膜约2小时。通过密度测定法进行定量。

抑制[3H]胸苷摄取[2]
将细胞以7000个细胞/孔的速度接种在预涂有1μg/孔人纤维连接蛋白的96孔Costar培养皿中。细胞生长至融合2天。将培养基换成含有0.25%小牛血清的DMEM培养48小时，然后将细胞与20 nM EGF、50μM溶血磷脂酸或50 ng/ml TPA（佛波酯）一起孵育16小时。16小时后，加入[3H]胸苷0.5μCi/ml，持续4小时。在加入有丝分裂原前30分钟或最后4小时，加入不同浓度的溶于10%Me2SO中的Tyrphostin，浓度为×100。通过闪烁计数对三氯乙酸可沉淀物质进行定量。基础EGF非依赖性活性不超过DHER-14细胞丝裂原依赖性[3H]胸苷摄取活性的5%。在添加EGF前30分钟或添加[3H]胸苷时添加Tyrphostins。因此，AG494和AG 1478存在20或4小时。

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免疫沉淀和免疫印迹分析[2]
将细胞以2×105个细胞/5 ml/孔的密度铺在Costar 6孔培养皿中，生长至融合2天，然后在含有0.25%小牛血清的2 ml/孔DMEM中饥饿48小时。在饥饿的最后16小时或最后2小时，加入溶于10%Me2SO中×100浓度的Tyrphostin。然后加入EGF（20 nM），在4°C下用EGF（20 nM）孵育平板2分钟，在此期间受体自磷酸化呈线性。通过加入1 ml/孔终止裂解缓冲液终止反应，该缓冲液含有20 mM HEPES（pH 7.4）、125 mM NaCl、1%Triton X-100、5 mM NaF、100μM NaVO3、200μM ZnCl2、1 mM EDTA、2 mM EGTA、1 mM PMSF、10μg/ml抑肽酶、5μg/ml亮肽。如上所述，使用单克隆抗体108进行免疫沉淀。将免疫复合物在沸腾的样品缓冲液中释放，然后在SDS-PAGE 5-15%梯度凝胶上运行样品，转移到硝化纤维中（ABN半干印迹），在TBST（Tris缓冲盐水（pH 7.4），1%吐温-20，5%牛血清白蛋白）中封闭30分钟，然后在TBST中用单克隆抗磷酸酪氨酸抗体PT66在40°C下探测3小时，在TBS中洗涤4次，然后用[125I]山羊抗小鼠抗体（1μCi/ml）重新检测。然后将印迹在TBS中洗涤4次，风干并通过放射自显影进行分析。

[1]. Tyrphostins. 2. Heterocyclic and alpha-substituted benzylidenemalononitrile tyrphostins as potent inhibitors of EGF receptor and ErbB2/neu tyrosine kinases. J Med Chem. 1991;34(6):1896-1907.

[2]. Tyrphostin AG 494 blocks Cdk2 activation. FEBS Lett. 1997;410(2-3):187-190.

[3]. Selective inhibition of the epidermal growth factor and HER2/neu receptors by tyrphostins. J Biol Chem. 1993 May 25;268(15):11134-42.

[4]. Cross-talk between EGF and BMP9 signalling pathways regulates the osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells. J Cell Mol Med. 2013;17(9):1160-1172.

[5]. SILICA-INDUCED NUCLEAR FACTOR- k B ACTIVATION: INVOLVEMENT OF REACTIVE OXYGEN SPECIES AND PROTEIN TYROSINE KINASE ACTIVATION. Journal of Toxicology and Environmental Health, Part A. Journal of Toxicology and Environmental Health, Part A. Volume 60, 2000 - Issue 1

酪氨酸激酶抑制剂B48（Tyrphostin B48）是酪氨酸激酶抑制剂家族的成员，可抑制表皮生长因子受体（EGFR）。（NCI）我们之前已证明，EGFR激酶选择性酪氨酸激酶抑制剂AG494在完整细胞中无法抑制EGFR激酶。然而，AG494已被证实能够抑制EGF或血清诱导的细胞增殖（Osherov等人，《生物化学杂志》268 (1993) 11134-11142）。在本初步报告中，我们发现AG494及其类似物AG490和AG555能够阻断Cdk2的激活。相反，选择性更高的EGFR激酶抑制剂AG1478（在完整细胞中也具有EGFR激酶抑制活性）则不具备这种作用。即使在 Cdk2 激活达到最大值时（即在 EGF 添加 20 小时后添加），AG 494 仍能完全抑制 Cdk2 的激活。其对 Cdk2 激活的抑制活性与其对 DNA 合成的抑制活性平行，强烈提示其靶点是参与 Cdk2 激活的分子机制之一。AG 494 及其类似物可能成为开发靶向细胞周期机制药物的有用先导化合物。[2] 间充质干细胞 (MSCs) 是多能祖细胞，可分化为多种谱系，包括骨、软骨和脂肪。表皮生长因子 (EGF) 可刺激细胞生长、增殖和分化。EGF 通过与细胞表面的表皮生长因子受体 (EGFR) 高亲和力结合，刺激其受体的内在蛋白酪氨酸激酶活性发挥作用，从而启动信号转导级联反应，引起细胞内多种生化变化，并调节细胞增殖和分化。我们已鉴定出BMP9是间充质干细胞（MSCs）中最具成骨活性的BMP之一。本研究旨在探讨EGF信号通路是否与BMP9存在相互作用，并调控BMP9诱导的成骨分化。我们发现，EGF在体外可增强BMP9诱导的MSCs早期和晚期成骨标志物的表达，而EGFR抑制剂吉非替尼和厄洛替尼或受体酪氨酸激酶抑制剂AG-1478和AG494能够以剂量和时间依赖的方式有效抑制这种增强作用。此外，EGF显著增强了BMP9诱导的小鼠胎肢外植体骨形成。体内干细胞移植实验表明，MSCs中EGF的外源性表达能够有效增强BMP9诱导的异位骨形成，从而获得更大、更成熟的骨块。有趣的是，我们发现，虽然EGF可以诱导MSCs中BMP9的表达，但EGFR的表达却通过Smad1/5/8信号通路直接被BMP9上调。因此，MSCs中EGF和BMP9信号通路之间的相互作用可能凸显了它们在调控成骨分化中的重要作用。利用BMP9和EGF之间的协同作用，有望在再生医学中促进成骨作用。[4]核因子-κB (NF-κB) 是一种多蛋白复合物，可以调控多种参与矽肺发生和发展的炎症细胞因子。本研究记录了体外二氧化硅暴露诱导小鼠腹腔巨噬细胞系（RAW264.7细胞）中NF-κB DNA结合活性的能力，并探讨了活性氧（ROS）和/或蛋白酪氨酸激酶在此激活过程中的作用。体外实验中，小鼠巨噬细胞暴露于二氧化硅（100 µg/ml）后，活性氧（ROS）生成量增加一倍，表现为化学发光（CL）增强，并激活了NF-κB。超氧化物歧化酶（SOD）可完全抑制二氧化硅诱导的CL，过氧化氢酶可抑制75%。多种抗氧化剂（过氧化氢酶、超氧化物歧化酶、α-生育酚、吡咯烷二硫代氨基甲酸酯或N-乙酰半胱氨酸）均可抑制NF-κB的激活。进一步的证据表明，ROS参与了NF-κB的激活：1 mM H₂O₂可增强NF-κB与DNA的结合，而过氧化氢酶可抑制这种激活。蛋白酪氨酸激酶的特异性抑制剂，如赫比霉素A、染料木素和AG494，可阻止二氧化硅处理细胞中NF-κB的激活。染料木素和AG494也能降低H2O2处理细胞中的NF-κB活化。结果证实，在暴露于二氧化硅的巨噬细胞中，几种细胞蛋白（分子量约为39、58-70和103 kDa）的酪氨酸磷酸化水平升高，而染料木素抑制了这种二氧化硅诱导的磷酸化。相反，蛋白激酶A或C的抑制剂，例如H89、星形孢菌素、钙磷蛋白C和H7，对二氧化硅诱导的NF-κB活化没有明显的抑制作用。结果表明，活性氧（ROS）可能在二氧化硅诱导的巨噬细胞NF-κB活化中发挥作用，并且酪氨酸激酶介导的磷酸化事件可能参与了这一活化过程。[5]

C16H12N2O3

280.2781

280.084

C, 68.56; H, 4.32; N, 9.99; O, 17.12

133550-35-3

5328771

Yellow to brown solid powder

1.4±0.1 g/cm3

586.9±50.0 °C at 760 mmHg

249 °C(dec.)

308.8±30.1 °C

0.0±1.7 mmHg at 25°C

1.736

2.4

93.35

3

4

3

21

446

0

O([H])C1=C(C([H])=C([H])C(/C(/[H])=C(\C#N)/C(N([H])C2C([H])=C([H])C([H])=C([H])C=2[H])=O)=C1[H])O[H]

HKHOVJYOELRGMV-XYOKQWHBSA-N

InChI=1S/C16H12N2O3/c17-10-12(8-11-6-7-14(19)15(20)9-11)16(21)18-13-4-2-1-3-5-13/h1-9,19-20H,(H,18,21)/b12-8+

2E-cyano-3-(3,4-dihydroxyphenyl)-N-phenyl-2-propenamide

AG-494; AG 494; 133550-35-3; Tyrphostin B48; alpha-Cyano-(3,4-dihydroxy)-N-phenylcinnamide; (E)-2-cyano-3-(3,4-dihydroxyphenyl)-N-phenylacrylamide; 139087-53-9; AG494; Tyrphostin AG-494.

2934.99.9001

Powder      -20°C    3 years

                     4°C     2 years

In solvent   -80°C    6 months

                  -20°C    1 month

注意： 本产品在运输和储存过程中需避光。

Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)

DMSO : ~100 mg/mL (~356.79 mM)

配方 1 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (8.92 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 40% PEG300 +5% Tween-80 + 45% Saline (这些助溶剂从左到右依次添加，逐一添加), 澄清溶液。
例如，若需制备1 mL的工作液，可将100 μL 25.0 mg/mL澄清DMSO储备液加入到400 μL PEG300中，混匀；然后向上述溶液中加入50 μL Tween-80+，混匀；加入450 μL生理盐水定容至1 mL。
*生理盐水的制备：将 0.9 g 氯化钠溶解在 100 mL ddH₂O中，得到澄清溶液。

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请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解配方/方案：
1、请先配制澄清的储备液(如：用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液));
2、取适量母液，按从左到右的顺序依次添加助溶剂，澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明，并不一定代表此产品 的实际溶解配方):
10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline);
假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中，混合均匀/澄清；向上述体系中加入50 μL Tween-80，混合均匀/澄清；然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL；
3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例;
4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出，可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶;
5、为保证最佳实验结果，工作液请现配现用！
6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液，请查看说明书或联系我们;
7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。