Auxinole

别名: 4-(2,4-二甲基苯基)-2-(1H-吲哚-3-基)-4-氧代丁酸
目录号: V11910 纯度: ≥98%
Auxinole 是一种有效的 TIR1/AFB 受体植物激素拮抗剂,可以与 TIR1 结合并阻止 TIR1-IAA-Aux/IAA 复合物的形成,从而抑制生长素响应基因的表达。
Auxinole CAS号: 86445-22-9
产品类别: New1
产品仅用于科学研究,不针对患者销售
规格 价格 库存 数量
1mg
5mg
10mg
50mg
100mg
250mg
500mg
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产品描述
Auxinole 是一种有效的 TIR1/AFB 受体植物激素拮抗剂,可以与 TIR1 结合并阻止 TIR1-IAA-Aux/IAA 复合物的形成,从而抑制生长素响应基因的表达。
生物活性&实验参考方法
体外研究 (In Vitro)
auxinole 强烈抑制生长素响应基因的表达,与 TIR1 结合以增加 TIR1-IAA-Aux/IAA 复合物。这是一种强大的 TIR1/AFB 受体生长素阻断拮抗剂。此外,辅助素还可以互补地抑制由激素引起的多种植物生长反应[1]。在根毛细胞中,辅助素显着降低 IAA 触发的解毒量。然而,[Ca2+]cyt 的短暂上升完全被 auxinole (20 μM) 抑制,它也填充了 Ca2+ 反应[2]。
参考文献

[1]. Rational design of an auxin antagonist of the SCF(TIR1) auxin receptor complex. ACS Chem Biol. 2012 Mar 16;7(3):590-8.

[2]. AUX1-mediated root hair auxin influx governs SCFTIR1/AFB-type Ca2+ signaling. Nat Commun. 2018 Mar 21;9(1):1174.

*注: 文献方法仅供参考, InvivoChem并未独立验证这些方法的准确性
化学信息 & 存储运输条件
分子式
C20H19NO3
分子量
321.369765520096
精确质量
321.136
CAS号
86445-22-9
PubChem CID
13077496
外观&性状
White to off-white solid powder
LogP
3.6
tPSA
70.2
氢键供体(HBD)数目
2
氢键受体(HBA)数目
3
可旋转键数目(RBC)
5
重原子数目
24
分子复杂度/Complexity
478
定义原子立体中心数目
0
SMILES
O=C(C(CC(C1C(C)=CC(C)=CC=1)=O)C1C2C(=CC=CC=2)NC=1)O
InChi Key
HGUYAIJBXSQXGV-UHFFFAOYSA-N
InChi Code
InChI=1S/C20H19NO3/c1-12-7-8-14(13(2)9-12)19(22)10-16(20(23)24)17-11-21-18-6-4-3-5-15(17)18/h3-9,11,16,21H,10H2,1-2H3,(H,23,24)
化学名
4-(2,4-dimethylphenyl)-2-(1H-indol-3-yl)-4-oxobutanoic acid
HS Tariff Code
2934.99.9001
存储方式

Powder      -20°C    3 years

                     4°C     2 years

In solvent   -80°C    6 months

                  -20°C    1 month

运输条件
Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)
溶解度数据
溶解度 (体外实验)
DMSO : ≥ 125 mg/mL (~388.96 mM)
Ethanol : ~2.5 mg/mL (~7.78 mM)
溶解度 (体内实验)
配方 1 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (7.78 mM) (饱和度未知) in 5% DMSO + 40% PEG300 + 5% Tween80 + 50% Saline (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。
*生理盐水的制备:将 0.9 g 氯化钠溶解在 100 mL ddH₂O中,得到澄清溶液。

配方 2 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (7.78 mM) (饱和度未知) in 5% DMSO + 95% (20% SBE-β-CD in Saline) (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。
*20% SBE-β-CD 生理盐水溶液的制备(4°C,1 周):将 2 g SBE-β-CD 溶解于 10 mL 生理盐水中,得到澄清溶液。

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配方 3 中的溶解度: ≥ 2.08 mg/mL (6.47 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 40% PEG300 + 5% Tween80 + 45% Saline (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。
例如,若需制备1 mL的工作液,可将 100 μL 20.8 mg/mL澄清的DMSO储备液加入到400 μL PEG300中,混匀;再向上述溶液中加入50 μL Tween-80,混匀;然后加入450 μL生理盐水定容至1 mL。
*生理盐水的制备:将 0.9 g 氯化钠溶解在 100 mL ddH₂O中,得到澄清溶液。


配方 4 中的溶解度: ≥ 2.08 mg/mL (6.47 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% (20% SBE-β-CD in Saline) (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。
例如,若需制备1 mL的工作液,可将100μL 20.8mg/mL澄清的DMSO储备液加入到900μL 20%SBE-β-CD生理盐水中,混匀。
*20% SBE-β-CD 生理盐水溶液的制备(4°C,1 周):将 2 g SBE-β-CD 溶解于 10 mL 生理盐水中,得到澄清溶液。

配方 5 中的溶解度: ≥ 2.08 mg/mL (6.47 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% Corn Oil (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。
例如,若需制备1 mL的工作液,可将100 μL 20.8 mg/mL 澄清 DMSO 储备液加入900 μL 玉米油中,混合均匀。

请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解配方/方案:
1、请先配制澄清的储备液(如:用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液));
2、取适量母液,按从左到右的顺序依次添加助溶剂,澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明,并不一定代表此产品 的实际溶解配方):
10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline);
假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中,混合均匀/澄清;向上述体系中加入50 μL Tween-80,混合均匀/澄清;然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL;

3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例;
4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出,可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶;
5、为保证最佳实验结果,工作液请现配现用!
6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液,请查看说明书或联系我们;
7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。
制备储备液 1 mg 5 mg 10 mg
1 mM 3.1117 mL 15.5584 mL 31.1168 mL
5 mM 0.6223 mL 3.1117 mL 6.2234 mL
10 mM 0.3112 mL 1.5558 mL 3.1117 mL

1、根据实验需要选择合适的溶剂配制储备液 (母液):对于大多数产品,InvivoChem推荐用DMSO配置母液 (比如:5、10、20mM或者10、20、50 mg/mL浓度),个别水溶性高的产品可直接溶于水。产品在DMSO 、水或其他溶剂中的具体溶解度详见上”溶解度 (体外)”部分;

2、如果您找不到您想要的溶解度信息,或者很难将产品溶解在溶液中,请联系我们;

3、建议使用下列计算器进行相关计算(摩尔浓度计算器、稀释计算器、分子量计算器、重组计算器等);

4、母液配好之后,将其分装到常规用量,并储存在-20°C或-80°C,尽量减少反复冻融循环。

计算器

摩尔浓度计算器可计算特定溶液所需的质量、体积/浓度,具体如下:

  • 计算制备已知体积和浓度的溶液所需的化合物的质量
  • 计算将已知质量的化合物溶解到所需浓度所需的溶液体积
  • 计算特定体积中已知质量的化合物产生的溶液的浓度
使用摩尔浓度计算器计算摩尔浓度的示例如下所示:
假如化合物的分子量为350.26 g/mol,在5mL DMSO中制备10mM储备液所需的化合物的质量是多少?
  • 在分子量(MW)框中输入350.26
  • 在“浓度”框中输入10,然后选择正确的单位(mM)
  • 在“体积”框中输入5,然后选择正确的单位(mL)
  • 单击“计算”按钮
  • 答案17.513 mg出现在“质量”框中。以类似的方式,您可以计算体积和浓度。

稀释计算器可计算如何稀释已知浓度的储备液。例如,可以输入C1、C2和V2来计算V1,具体如下:

制备25毫升25μM溶液需要多少体积的10 mM储备溶液?
使用方程式C1V1=C2V2,其中C1=10mM,C2=25μM,V2=25 ml,V1未知:
  • 在C1框中输入10,然后选择正确的单位(mM)
  • 在C2框中输入25,然后选择正确的单位(μM)
  • 在V2框中输入25,然后选择正确的单位(mL)
  • 单击“计算”按钮
  • 答案62.5μL(0.1 ml)出现在V1框中
g/mol

分子量计算器可计算化合物的分子量 (摩尔质量)和元素组成,具体如下:

注:化学分子式大小写敏感:C12H18N3O4  c12h18n3o4
计算化合物摩尔质量(分子量)的说明:
  • 要计算化合物的分子量 (摩尔质量),请输入化学/分子式,然后单击“计算”按钮。
分子质量、分子量、摩尔质量和摩尔量的定义:
  • 分子质量(或分子量)是一种物质的一个分子的质量,用统一的原子质量单位(u)表示。(1u等于碳-12中一个原子质量的1/12)
  • 摩尔质量(摩尔重量)是一摩尔物质的质量,以g/mol表示。
/

配液计算器可计算将特定质量的产品配成特定浓度所需的溶剂体积 (配液体积)

  • 输入试剂的质量、所需的配液浓度以及正确的单位
  • 单击“计算”按钮
  • 答案显示在体积框中
动物体内实验配方计算器(澄清溶液)
第一步:请输入基本实验信息(考虑到实验过程中的损耗,建议多配一只动物的药量)
第二步:请输入动物体内配方组成(配方适用于不溶/难溶于水的化合物),不同的产品和批次配方组成不同,如对配方有疑问,可先联系我们提供正确的体内实验配方。此外,请注意这只是一个配方计算器,而不是特定产品的确切配方。
+
+
+

计算结果:

工作液浓度 mg/mL;

DMSO母液配制方法 mg 药物溶于 μL DMSO溶液(母液浓度 mg/mL)。如该浓度超过该批次药物DMSO溶解度,请首先与我们联系。

体内配方配制方法μL DMSO母液,加入 μL PEG300,混匀澄清后加入μL Tween 80,混匀澄清后加入 μL ddH2O,混匀澄清。

(1) 请确保溶液澄清之后,再加入下一种溶剂 (助溶剂) 。可利用涡旋、超声或水浴加热等方法助溶;
            (2) 一定要按顺序加入溶剂 (助溶剂) 。

生物数据图片
  • Auxin induces Ca2+-influx and increase of the cytosolic-free Ca2+-concentration of root-hair cells. a Average ion flux kinetics determined with ion-selective electrodes (H+ black symbols, left axis; Ca2+ red symbols, right axis, n = 12 ± s.e.m.). After 3 min, IAA was applied to a final concentration of 10 µM (black bar, curves are interrupted at time point of application). b IAA-evoked changes of the cytosolic-free Ca2+-concentration in root-hair cells, determined with R-GECO1. Images of a single root-hair cell, before, during, and after the application of 10 µM IAA. IAA was applied at t = 0.5 min. False colored images indicate R-GECO1 fluorescence intensity, relative to the average value in ROI (red line) just before IAA application (color code above the panels). The scale bar represents 20 µm. c Simultaneous measurement of IAA-induced depolarization (black trace, left axes) and change in R-GECO1 fluorescence intensity (red trace, right axes) of a ROI that includes the nucleus, in a single root-hair cell (arrow: time point of 1 s application of 10 µM IAA). Representative measurement from 26 experiments. d IAA-dependent changes in R-GECO1 fluorescence intensity determined across the root and representative of 7 experiments for each IAA concentration (indicated by colored lines). e Max. depolarization rate (closed bars) and slope of R-GECO1 intensity change (open bars) of single root-hair cells to 1 s pulses of 10 µM IAA and auxin analogs, as indicated. Data are given as percentage of the response to 3-IAA (n = 8 ± s.e.m. for BA and n = 16 ± s.e.m. for auxins), asterisks indicate significant reductions (Students t-test, p < 0.05). f Max. depolarization rate (closed bars) and slope of R-GECO1 intensity change (open bars) of single root-hair cells to a 1 s pulses of 10 µM IAA. Root-hair cells were measured under control conditions, or after 20 min pretreatment with 20 µM auxinole. Bars represent percentage of control (n = 10 ± s.e.m. for control and 11 ± s.e.m. for auxinole), asterisks indicate significant reductions (Students t-test, p < 0.05).[1].AUX1-mediated root hair auxin influx governs SCFTIR1/AFB-type Ca2+ signaling. Nat Commun. 2018 Mar 21;9(1):1174.
  • The auxin-induced plasma membrane depolarization as well as H+- and Ca2+-influx are dependent on intracellular auxin perception. a IAA-dependent changes in the membrane potential of wild-type and receptor mutant root hairs. Representative traces of A. thaliana Col-0 in the presence (green) and absence (black) of 20 µM auxinole as well as of the tir1-1 (blue) and tir1-1afb2-3afb3-4 (red) mutants following a 1 s stimulation with 10 µM IAA (arrow). b Maximal depolarization rate (black bars) and initial change of H+- (gray bars) and Ca2+-flux (open bars), evoked by 10 µM IAA in roots of Col-0 (n = 14 ± s.e.m. for depolarization; n = 10 ± s.e.m. for ion fluxes), Col-0 pretreated with 20 µM auxinole (n = 6 ± s.e.m. for depolarization; n = 4 ± s.e.m. for ion fluxes), as well as in tir1-1 (n = 8 ± s.e.m. for depolarization; n = 16 ± s.e.m. for ion fluxes) and in tir1-1afb2-3afb3-4 (n = 6 ± s.e.m. for depolarization; n = 9 ± s.e.m. for ion fluxes). Values are given as the percentage of the wild-type response. Asterisks indicate significant reductions (Students t-test, p < 0.05).[1].AUX1-mediated root hair auxin influx governs SCFTIR1/AFB-type Ca2+ signaling. Nat Commun. 2018 Mar 21;9(1):1174.
  • Cytosolic application of IAA triggers a lateral Ca2+ wave in roots. a IAA was applied iontophoretically together with Lucifer yellow (LY) via an intracellular double-barreled microelectrode. Panel upper left, transmitted light signal, note microelectrode on right. Panel lower left, LY fluorescence signal at indicated time value. Panels middle and right, false color images of R-GECO1 intensity, normalized to the average value of ROI1 just before stimulation with IAA, as indicated by the scale on left. Time after experiment onset is given. IAA was injected with a current of -1 nA to the cell in ROI1, from t = 0.5 to 1.5 min. Representative measurement from 20 experiments. The scale bar represents 20 µm. b Representative time-dependent changes in the fluorescence signal of LY (green line, right axis) and the R-GECO1 signals of ROI1 (black line, left axis) and ROI2 (red line, left axis), relative to their average fluorescence intensity at the start of injection. The light gray bar indicates the period of iontophoretic injection of IAA. Representative measurement from 20 experiments. c, d Responses of A. thaliana Col-0 root-hair cells to iontophoretical intracellular injection of IAA, 2-NAA, and IAA in roots pretreated with 20 µM auxinole. c Average value of max. depolarization. d Average changes in R-GECO1 signals of ROI1 (closed bars) and ROI2 (open bars, n = 20 ± s.e.m. for IAA; n = 11 ± s.e.m. for 2-NAA and n = 6 ± s.e.m. for IAA w/auxinole), asterisks indicate significant differences (Students t-test, p < 0.05). e Average net Ca2+- (red) and H+- (black) flux kinetics of wild-type (closed symbols) and cngc14-2 (open symbols) roots. After 3 min, IAA was applied to a final concentration of 10 µM (black bar), curves are interrupted at time point of IAA stimulation, n = 17 ± s.e.m. for Col-0 Ca2+-fluxes, n = 18 ± s.e.m. for cngc14-2 Ca2+-fluxes, n = 7 ± s.e.m. for H+-fluxes. f IAA-dependent changes in the membrane potential of wild-type and cngc14-2 mutant root hairs. Average traces of A. thaliana Col-0 (black) and of the cngc14-2 (red) mutant following a 1 s stimulation with 10 µM IAA (arrow) (n = 6 ± s.e.m. for Col-0 and n = 7 ± s.e.m. for cngc14-2).[1].AUX1-mediated root hair auxin influx governs SCFTIR1/AFB-type Ca2+ signaling. Nat Commun. 2018 Mar 21;9(1):1174.
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