Tubulin polymerization; microtubule

Eribulin (1-100 nM; 72 h) 抑制细胞生长，对于 LM8 和 Dunn 细胞的 IC50 值分别为 22.8 和 21.5 nM [1]。 Eribulin（10-50 nM；12-72 小时）以 50 nM 剂量持续 24 小时可显着促进 LM8 细胞的早期凋亡 [1]。在 LM8 细胞中，艾日布林（10-50 nM；12-72 小时）在 50 nM 下产生 G2/M 期阻滞 12 小时，而在 10 nM 下长期治疗（72 小时）不会诱导 G2/M 期阻滞[1 ]。艾日布林（1-50 nM；12 小时）不会促进 LM8 细胞衰老 [1]。艾日布林（1-10 nM；16 小时）在 LM8 细胞中产生形态改变并在低浓度下抑制细胞迁移 [1]。

艾日布林（1 mg/kg；每周静脉注射一次，持续 2 周）可抑制大鼠骨肉瘤的初始肿瘤发展和肺转移 [1]。低剂量时，艾日布林（1 mg/kg；静脉注射一次）可抑制循环肿瘤细胞 (CTC) 的发育 [1]。 Eribulin mesylate (1-100 nM; 72 h) 抑制细胞生长，对于 LM8 和 Dunn 细胞的 IC50 值分别为 22.8 和 21.5 nM[1]。 Eribulin mesylate（10-50 nM；12-72 小时）可显着促进以 50 nM 剂量处理 24 小时的 LM8 细胞的早期凋亡[1]。在 LM8 细胞中，甲磺酸艾日布林（10-50 nM；12-72 小时）在 50 nM 下诱导 G2/M 期停滞 12 小时，而长期治疗在 10 nM（72 小时）不会诱导 G2/M 期停滞[1]。 Eribulin mesylate（1-50 nM；12 小时）不会促进 LM8 细胞衰老 [1]。 Eribulin mesylate（1-10 nM；16 小时）在低浓度下会产生形态改变并抑制 LM8 细胞的细胞迁移 [1]。

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因此，在这项研究中，我们研究了微管抑制剂甲磺酸艾立布林（eribulin mesylate）对骨肉瘤肺转移的抑制作用。在浓度＞增殖IC50时，艾里布林诱导转移性骨肉瘤细胞系LM8的细胞周期阻滞和凋亡。然而，在浓度<增殖IC50（低剂量）时，艾里布林改变了细胞形态并减少了LM8的迁移。低浓度的eribulin也降低了迁移过程中的方向性、腺瘤性息肉病大肠杆菌蛋白的外周定位和局灶性粘连的周转。在三维胶原培养系统中，低浓度的艾里布林抑制了肿瘤细胞增殖和集落形成。[1]

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Eribulin甲磺酸酯（E7389），一种海洋天然产物卤球粒蛋白B的合成类似物，正在进行治疗癌症的III期临床试验。Eribulin靶向微管，通过抑制微管生长来抑制微管+末端的动态不稳定性，而对缩短几乎没有影响或没有影响[Jordan，M.A.，et al.（2005）Mol.癌症Ther.41086-105]。使用[（3）H]艾里布林，我们发现艾里布林在单个位点结合可溶性微管蛋白；然而，这种结合是复杂的，总K（d）为46微M，但对25%的微管蛋白亚群也显示出真正的或明显的非常高的亲和力（K（d=0.4微M）。Eribulin还以每微管14.7+/-1.3个分子的最大化学计量比结合微管（K（d）=3.5微M），强烈表明微管末端存在相对较高的亲和力结合位点。在100 nM的浓度下，抑制微管+末端生长50%的浓度，我们发现每两个微管结合一个艾里布林分子，这表明在微管末端结合一个艾里布林分子可以有效地抑制其生长。Eribulin不能抑制微管负端的动态不稳定性。微管与2或4微M长春花碱预孵育诱导了额外的低亲和力艾里布林结合位点，最有可能在张开的微管末端。总的来说，我们的结果表明，艾里布林与微管正端结合具有高亲和力，从而抑制了动态不稳定性。[2]

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Eribulin（E7389）是癌症III期临床试验中卤软骨蛋白B的合成类似物，与微管蛋白和微管结合。在低浓度下，它抑制间期细胞中微管动态不稳定的生长期，阻止有丝分裂，并诱导细胞凋亡，这表明抑制纺锤体微管动态会诱导有丝分裂阻滞。为了进一步验证这一假设，我们通过延时共聚焦显微镜在活的有丝分裂U-2 OS人骨肉瘤细胞中测量了艾里布林对着丝粒及其附着的动粒微管动力学的影响。绿色荧光蛋白标记的着丝粒结合蛋白B标记着丝粒和动粒微管加末端。在对照细胞中，姐妹染色单体着丝粒对在张力下交替增加和减少分离（拉伸和放松）。Eribulin在阻止有丝分裂的浓度下抑制着丝粒动力学。在60 nmol/L的eribulin（2倍有丝分裂IC（50））下，松弛率被抑制了21%，暂停时间增加了67%，动态性降低了35%（但平均着丝粒间距没有减少），表明eribulin降低了运动粒处正常的微管依赖性纺锤体张力，阻止了有丝分裂检查点通过的信号。我们还研究了一种更有效但在肿瘤中效果较差的抗增殖线粒体衍生物ER-076349。在2 x IC（50）（4 nmol/L）时，有丝分裂阻滞也与着丝粒动力学的抑制同时发生。尽管两种化合物的培养基IC（50）值相差15倍，但细胞内浓度相似，表明与艾里布林相比，ER-076349在细胞中的相对摄取更广泛。动粒微管动力学的抑制与有丝分裂阻滞之间的强相关性表明，eribulin阻断有丝分裂的主要机制是抑制纺锤体微管动力学。[3]

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Eribulin（E7389），一种机制独特的微管抑制剂，在癌症的III期临床试验中，相对于更有效的化合物ER-076349，在体内表现出优异的疗效，这一事实无法通过不同的药代动力学特性来解释。通过观察，提出了一种基于细胞的药效学解释，即使用全剂量/反应治疗的流式细胞术有丝分裂阻滞可逆性测定表明，艾里布林（而非ER-076349）诱导的有丝分裂阻断是不可逆的。药物洗脱后5天的细胞存活率建立了有丝分裂阻滞可逆性和长期细胞存活之间的关系。U937、Jurkat、HL-60和HeLa细胞也出现了类似的结果，排除了细胞类型特异性作用。对其他微管蛋白药物的研究表明，有丝分裂阻滞的可逆性是抗有丝分裂药物的一个可量化的、化合物特异性的特征。Bcl-2磷酸化模式与eribulin和ER-076349有丝分裂阻断可逆模式平行，表明持续的Bcl-2磷酸化导致eribulin不可逆阻断后长期细胞存活率丧失。药物摄取和洗脱/保留研究表明，[3H]eribulin在细胞内的积累水平低于[3H]ER-076349，但保留时间更长，水平更高。不可逆长春新碱和可逆长春花碱也有类似的发现，表明持续的细胞滞留是不可逆性的一个组成部分。我们的研究结果表明，eribulin的体内优势源于其诱导不可逆有丝分裂阻滞的能力，这似乎与持续的药物滞留和持续的Bcl-2磷酸化有关。更广泛地说，我们的研究结果表明，抗有丝分裂剂的化合物特异性可逆性特征有助于基于细胞的药效学和体内药代动力学之间的相互作用，从而定义了间歇给药条件下的抗肿瘤疗效[4]。 在患有骨肉瘤的小鼠中，甲磺酸艾日布林（1 mg/kg；每周一次静脉注射，持续两周）可减少原发肿瘤和肺转移瘤的生长[1]。低浓度时，甲磺酸艾日布林（1 mg/kg；静脉注射一次）可抑制循环肿瘤细胞 (CTC) 的出现 [1]。

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在小鼠骨肉瘤转移模型中，按照标准时间表施用更高剂量的Eribulin抑制了肺转移和原发性肿瘤生长。频繁的低剂量艾里布林给药（每4天0.3mg/kg×4）有效地抑制了肺转移，但对原发性肿瘤的生长几乎没有影响。总的来说，我们的研究结果表明，eribulin可以减少骨肉瘤的肺转移。[1]

Eribulin对小鼠模型肺转移的抑制作用 我们首先使用临床给药方案在小鼠模型中研究了Eribulin是否抑制骨肉瘤肺转移。根据包装说明书，在第1天和第8天以1.4mg/m2的剂量临床给药艾立布林。人类和小鼠的药代动力学数据显示，给小鼠服用1mg/kg艾立布林与人类服用1.4mg/m2艾立布林的药代学相似。因此，在骨肉瘤转移模型中，我们每7天×2次以1mg/kg的剂量给药艾立布林（图1A）。治疗组小鼠的体重明显低于对照组（图1B）。Eribulin治疗显著抑制了原发性肿瘤的生长（图1C）并诱导了肿瘤细胞的凋亡（图1D）。我们通过计算转移灶（图1E）并测量其在组织切片中的面积（图1F顶部）来评估肺转移。Eribulin明显减少了肺水肿。组织学图像显示，对照组大转移灶浸润肺实质。相比之下，治疗组正常肺泡结构内的小转移灶是孤立的（图1F底部）。为了确定艾里布林是否减少了CTC，收集了血液样本并培养形成菌落。与对照组相比，治疗组的菌落数显著减少（图1G）。这些结果表明，eribulin可减少骨肉瘤的原发性肿瘤生长和肺转移。

Eribulin与可溶性微管蛋白结合[2]
在室温（22°C）下，将磷酸纤维素纯化的微管蛋白（1.8μM）在PEM 50缓冲液（50 mM PIPES、1 mM EGTA和1 mM MgSO4，pH 6.9）和100μM GTP中与[3H]eribulin（0.1μM-70μM）一起孵育20分钟，然后将每个样品的100μL加入Zeba™微球脱盐柱中。在添加艾立布林后立即测量每个样品的比活性。按照制造商的说明，将柱在1500×g下离心2分钟。测定了微管蛋白流通中的蛋白质含量和放射性。背景放射性标记是通过在使用的艾里布林浓度下离心不含蛋白质的样品来评估的。背景放射性水平与艾里布林浓度相关，平均4.2%的起始艾里布林在没有蛋白质存在的情况下通过柱。从所有实验放射性测量值中减去该值。

通过测量不同艾里布林浓度和单一固定浓度的微管蛋白（2μM）下与艾里布林结合的微管蛋白分数来量化平衡结合数据。以下简单双曲绑定模型与数据相吻合：
YD=Ymax D/（Kd+D） 在该模型中，D是艾里布林的总浓度，YD和Ymax分别是亚饱和和无限浓度D下结合的艾里布林与微管蛋白的比率，Kd是平衡结合常数。使用KaleidaGraph®3.5通过非线性回归确定Ymax和Kd的最佳拟合值。使用所有数据点作为单个数据集计算艾里布林与可溶性微管蛋白结合的Ymax和Kd值以及标准误差。

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微管解聚[2]
使用温度控制的Beckman Coulter分光光度计通过浊度测量微管解聚。通过在PEM 100缓冲液（100 mM PIPES、1 mM EGTA和1 mM MgSO4，pH 6.9）和1 mM GTP中在30°C下孵育30分钟，引发富含MAP的微管蛋白（3 mg/ml）的聚合。然后通过25号针将微管剪切八次，并让其在15分钟内恢复稳定状态。将微管悬浮液（100μL）的等分试样加入试管中，并放置在30°C的加热分光光度计中。在时间零点加入Eribulin（1μM-20μM），在每分钟350 nm的波长下读取吸光度读数30分钟。

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微管负端的动态不稳定性[2]
如前所述，测量了艾里布林存在下微管的动态不稳定性。简而言之，微管（18μM微管蛋白）由磷酸纤维素纯化的微管蛋白在PMEM缓冲液（86 mM PIPES、26 mM MES、1 mM EGTA和1.4 mM MgSO4，pH 6.8）和1 mM GTP中组装而成，存在或不存在艾里布林。使用海胆鞭毛轴突丝片段使微管成核，并在35°C下孵育30分钟以达到稳定状态。使用IX71奥林巴斯倒置显微镜通过视频增强微分干涉对比显微镜记录单个微管的行为，并分析其生长和缩短事件。如前所述，负端与正端是不同的。每种情况下测量了45到50次生长和缩短事件。

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Eribulin与微管的结合和微管长度的测定[2]
如上所述，从富含MAP的微管蛋白（3mg/ml）组装微管并剪切以获得大量短微管，然后再孵育20分钟以恢复稳定状态。将[3H]厄立布林（0.1μM-10μM）加入375μL剪切的微管中，并将样品立即分层到微管稳定垫上（PEM缓冲液中的30%甘油和10%DMSO），以尽量减少高浓度厄立布林下的解聚（与药物的孵育时间约为1-2分钟）。使用Beckman Coulter Optima超离心机（108000×g，60分钟，30°C）在SW 50.1摆动斗式转子中离心收集微管。丢弃可溶性部分，用PEM缓冲液仔细洗涤微管颗粒，并在4°C下将其溶解在0.1 N NaOH中过夜。第二天测量了颗粒的蛋白质含量和放射性。背景放射性标记是通过使用20μM鬼臼毒素抑制微管聚合进行平行测定来测量的。所有结果均减去背景。

微管长度通过电子显微镜测定，用于测定艾里布林与微管结合的化学计量比。每个实验测量至少300个微管的长度。对于对照组，每个实验的平均微管长度在2.4至4.2μm之间，总体平均值约为3μm。用0.2%戊二醛固定微管，将其放置在电子显微镜网格上，用细胞色素c（1mg/mL）和1%醋酸铀酰染色，并使用JEOL 1230透射电子显微镜（80 kV）成像，其中对照组不含eribulin，或在如下所述的eribulin温育后。

为了在化学计量测定中解释艾里布林诱导的微管长度变化，将微管与规定的艾里布林浓度一起孵育1-2分钟，并通过DMSO/甘油稳定垫离心至更致密的70%蔗糖层。如上所述固定和染色颗粒微管，并通过电子显微镜测量其长度。在5和10μM的浓度下，艾里布林分别使微管的平均长度缩短了17%和29%。在计算这两种浓度下每微管结合的艾里布林时，考虑了这些长度变化。

使用每个颗粒的质量和放射性、微管长度的平均测量值和每μm 1690个微管蛋白异二聚体的因子计算每个微管结合的艾里布林分子的数量。使用该样品的微管颗粒质量计算每个样品的每升微管数。使用KaleidaGraph®3.5使用上述方程计算结合数据的非线性回归。针对单个实验计算了艾里布林与微管结合的Ymax（每个微管结合的艾里布林分子的比率）和Kd值，并确定了所有实验的平均值和标准误差。 长春花碱对Eribulin与微管结合的影响[2]
在加入[3H]艾里布林之前，将未标记的长春花碱以2μM或4μM的浓度添加到剪切的富含MAP的微管中15分钟，然后如上所述处理样品。用于长度测量的电子显微镜样品是在长春花碱孵育后，但在艾立布林之前采集的。与之前的研究结果一致，即长春碱可以稳定微管末端，防止缩短，在长春碱（2或4μM）存在的情况下，艾里布林没有诱导微管长度的显著变化；因此，使用在每个实验中测量的长春碱处理的微管长度来计算长春碱存在下每个微管结合的艾里布林的化学计量比。

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微管末端的形态[2]
为了确定药物对微管末端的影响，将未切除的微管与无药物、50μM艾瑞布林或50μM长春花碱一起孵育15分钟，然后将5μL样品轻轻加入电子显微镜网格上的15μL戊二醛（终浓度0.1%）中，并如上所述染色。对50个微管的两端进行了检查，每个微管用于对照和艾里布林处理的微管，30个微管用于长春花碱处理的微管。

细胞增殖测定[1]
细胞类型： LM8 细胞和 Dunn 细胞
测试浓度： 0、1、10、100 nM
孵育持续时间：72小时
实验结果：以剂量依赖性方式抑制细胞增殖。

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细胞凋亡分析 [1]
细胞类型： LM8 细胞
测试浓度： 0、10、50 nM
孵育时间：12、24、48、72 小时
实验结果：50 nM 浓度在 12 小时后诱导早期细胞凋亡。在 10 nM 浓度下未检测到细胞凋亡。

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细胞周期分析[1]
细胞类型： LM8 细胞
测试浓度： 0、10、50 nM
孵育持续时间：12、24、48、72 小时
实验结果：用 50 nM 处理 12 小时诱导G2/M 逮捕。 10 nM 处理不会诱导 G2/M 停滞。

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细胞增殖试验[1]
根据制造商的说明，用CCK-8 WST检测试剂盒评估细胞存活率。简而言之，将LM8细胞以每孔1×104个细胞的密度铺在96孔板中，在含有10%FBS的DMEM中孵育24小时。然后，用不同浓度的Eribulin处理细胞72小时。然后将CCK-8试剂加入培养基中，在37°C下进一步孵育2小时。在450nm处用平板读数器测量吸光度。

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流式细胞术分析[1]
将细胞以每孔3×105个细胞的浓度铺在24孔板上，生长24小时。然后用指定的Eribulin浓度处理细胞指定的时间段。它们用膜联蛋白-V和7-氨基放线菌素D（7-AAD）染色以鉴定凋亡，并用碘化丙啶染色以进行细胞周期分析。在Guava EasyCyte Plus流式细胞仪系统中分析样品。

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免疫荧光[1]
LM8细胞（1×103）在涂有纤维连接蛋白（10μg/mL）的8孔培养玻片上生长，孵育24小时。然后用Eribulin处理细胞16小时。用4%多聚甲醛固定20分钟，用0.1%Triton X-100（APC和p-FAK染色）或0.1%吐温20（α-微管蛋白染色）渗透10分钟，然后在室温下用0.1%牛血清白蛋白（BSA）和0.1%吐温20封闭60分钟。对于长春花素染色，在固定之前，用冰冷的渗透缓冲液（pH 6.9；10 mM HEPES，50 mM NaCl，3 mM MgCl2，0.5%Triton X-100，300 mM蔗糖和1 mM EGTA）在4°C下渗透细胞1分钟。细胞在4°C下用一抗（α-微管蛋白1:500；p-FAK 1:250；APC 1:250；长春花素1:50）染色过夜，然后进行二抗染色，并在室温下用Hoechst 33342复染30分钟。对于F-actin染色，根据制造商的说明，将细胞与罗丹明鬼笔环肽一起孵育。

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突出测量[1]
将LM8细胞以每孔1×103个细胞的速度铺在8孔培养玻片上，生长24小时。用Eribulin处理细胞并孵育16小时。长度>20μm的微球被定义为突起。对来自三个生物复制品的150多个细胞进行了分析。

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迁移分析[1]
如前所述，进行了改良的Boyden室迁移和伤口愈合试验。简而言之，在24孔Bio-Coat细胞迁移室中进行了12小时的改良Boyden室迁移试验。膜的下表面涂有30μg/mL的纤维连接蛋白，用于触觉迁移。LM8细胞以1×104个细胞的比例应用于上腔，用棉签从上表面去除非迁移性细胞。将迁移的细胞固定在70%v/v甲醇中，用结晶紫染色并计数。对于伤口愈合试验，将融合的LM8细胞刮伤，用磷酸缓冲盐水（PBS）彻底清洗，以去除分离的细胞和碎片。然后用Eribulin处理12小时。用斐济/ImageJ测量伤口图像。通过在伤口愈合过程中在室温下用100%冰冷的甲醇固定细胞10分钟，然后用含有1%BSA和0.1%吐温20的PBS封闭细胞30分钟来评估细胞方向性。MTOC在4°C下用抗周蛋白抗体（1:1000）染色过夜。然后将细胞与抗兔IgG和赫斯特在室温下孵育30分钟。对来自三个独立实验的100多个细胞进行了分析。

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三维胶原蛋白培养[1]
通过将3.8mg/mL酸溶性大鼠尾胶原在DMEM中稀释至1.5mg/mL，并用1mol/L NaOH中和至pH 7.4，制备胶原凝胶。将细胞悬浮液以200个细胞/孔的密度加入孔中，然后立即转移到37°C的培养箱中30分钟以引发聚合。然后用含有Eribulin的培养基覆盖胶原凝胶。在第1、4和6天在显微镜下观察细胞或集落。使用Fiji/ImageJ软件分析了入侵媒介的长度和菌落大小。菌落形成率计算为第4天每施加一个细胞数的菌落数。

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细胞增殖和有丝分裂指数[3]
将细胞接种在聚-L-赖氨酸处理过的无菌玻璃盖玻片上（50mg/ml，2小时，37°C，用无菌水洗涤一次），以1×105个细胞/2 ml/孔的速度接种在六孔板中。一天后，用含有不同浓度（0.003-10000 nmol/L）的Eribulin或ER-076349的新鲜培养基替换培养基，并进一步培养一个细胞周期（28小时）。通过将漂浮细胞与附着细胞结合来收获细胞，附着细胞是通过胰蛋白酶化（0.5 mg/ml的PBS溶液：137 mmol/L NaCl，2.7 mmol/L KCl，1.5 mmol/L KH2PO4，8.1 mmol/L Na2HPO4，0.5 mmol/L EDTA，pH 7.2）（5分钟，37°C）释放的，并使用血细胞计数器计数活细胞。台盼蓝染料用于区分活细胞和死细胞。为了评估有丝分裂指数，细胞在药物存在和不存在的情况下生长20小时。有丝分裂指数是通过显微镜检查福尔马林/甲醇（如下所述）固定的细胞中的染色体和GFP-CENP-B着丝粒来确定的，用4,6-二脒基-2-苯基吲哚（DAPI）染色，并使用尼康Eclipse E800显微镜进行成像，该显微镜具有60倍和100倍的物镜（两者的数值孔径均为1.4）。结果是5个独立实验的平均值和标准误差，其中每个实验中每个条件下至少计数1000个细胞。IC50是通过增殖或有丝分裂指数与药物浓度的双倒数图的线性回归来确定的。

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细胞摄取和洗脱/保留研究[4]
U-937细胞中[3H]Eribulin、[3H]ER-076349、[3H]长春新碱和[3H]长春花碱的摄取和清除/保留评估如下。将氚化化合物加入到无菌的1.5 mL螺旋盖微量离心管中，并风干以去除溶剂。在100μL细胞培养基中重新悬浮化合物后，将22.2×106个细胞加入0.9 mL完全培养基（包括胎牛血清、谷氨酰胺和抗生素）中。孵化温度为37°C，经常涡旋。60分钟后，根据经验确定了达到最大放射性吸收所需的最小时间，即化合物吸收与药物浓度的函数关系。细胞相关放射性测定如下。取三份25-μL细胞样品，分层放置在400μL Sarstedt管中300μL冰冷的20%蔗糖上，然后以8500×g离心1分钟，将细胞与标记培养基分离，并在离心通过蔗糖的过程中洗涤细胞。带有颗粒细胞的试管立即在干冰/乙醇浴中冷冻。立即将含有颗粒的仍然冷冻的试管底部直接切入闪烁瓶中，然后加入闪烁液和放射性计数（Beckman LS 6000计数器）。由于配对药物之间细胞摄取的差异出乎意料地大（图6），不同的预加载浓度用于洗脱/保留研究，以相等的细胞内药物水平开始（虚线，图6A和B）。因此，洗脱/保留研究的预加载浓度使用了800 nmol/L[3H]艾里布林和100 nmol/L[4H]ER-076349，以及600 nmol/L ~3H]长春新碱和190 nmol/L的[3H]长春碱。

动物/疾病模型： 将 LM8 细胞注射到 4 周龄的 C3H/HeN 小鼠体内 [1]
剂量： 1 mg/kg
给药途径： 静脉注射 (iv)，每周一次，持续 2 周
实验结果： 抑制原发肿瘤生长并诱导肿瘤细胞凋亡。减少肺转移。减轻体重。

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本研究使用 4 周龄的 C3H/HeN 小鼠。LM8 细胞可通过皮下和骨内移植转移至肺部。研究人员选择皮下移植是因为与骨内移植相比，皮下移植能更有效地模拟转移过程，例如循环肿瘤细胞 (CTC) 的出现和肺转移的形成。在艾立布林（Eribulin）减少转移的实验中，将LM8细胞（每只小鼠5 × 10⁶个）注射到同系小鼠背部的皮下组织中。将动物随机分为对照组和治疗组。艾立布林（Eribulin）以1 mg/kg/7天×2次或0.3 mg/kg/4天×4次的剂量经尾静脉注射给药。由于荷瘤小鼠在皮下移植后约5周死于肺转移，因此在肿瘤细胞注射后4周进行组织学评估和肺转移灶计数。将肺组织用10%福尔马林固定，石蜡包埋，切成8 μm厚的切片，并用苏木精-伊红（H&E）染色。使用原位细胞死亡检测试剂盒，按照制造商的说明，通过TUNEL法检测石蜡切片中的细胞凋亡情况。为了进行循环肿瘤细胞（CTC）定量，如上所述，在LM8移植两周后，以1 mg/kg的剂量向尾静脉注射艾立布林。从尾静脉采集外周血样本（40 μL），并在添加了10%胎牛血清（FBS）和青霉素（100 U/mL）-链霉素（100 μg/mL）的DMEM培养基中培养，以形成集落，如前所述。集落用10%福尔马林固定，结晶紫染色，并进行计数。[1]

吸收、分布和排泄
主要以原形经粪便排出。
43 L/m2 至 114 L/m2
1.16 L/hr/m2 至 2.42 L/hr/m2（剂量范围为 0.25 mg/m2 至 4.0 mg/m2）。[FDA]

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代谢/代谢物
艾立布林没有主要的人体代谢物，体外 CYP3A4 对艾立布林的代谢作用可忽略不计。

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生物半衰期
约 40 小时

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艾立布林（甲磺酸艾立布林）是哈利康德林 B 的合成类似物，哈利康德林 B 是一种源自海洋海绵 Halichondria okadai 的天然产物。它是一种微管动力学抑制剂，用于治疗转移性乳腺癌和脂肪肉瘤。以下是根据现有数据总结的其药代动力学 (PK) 特征：



吸收

静脉注射 (IV) 2-5 分钟即可吸收，确保艾立布林完全生物利用。



分布

分布容积大（约 43-114 L/m²），表明其组织分布广泛。


血浆蛋白结合率中等，为 49% 至 65%。



代谢

主要经肝脏代谢，少量经 CYP3A4 代谢，大部分药物以原形艾立布林排出。


它不是主要 CYP 酶的显著底物、抑制剂或诱导剂，从而降低了药物相互作用的风险。



消除

消除半衰期约为 40 小时，因此可在 21 天周期的第 1 天和第 8 天给药。


主要经粪便排出 (82%)，少量 (9%) 以原形经尿液排出。


特殊人群

肝功能损害：轻度（Child-Pugh A 级）或中度（Child-Pugh B 级）肝功能损害患者由于药物暴露量增加，需要减少剂量。尚未研究严重肾功能损害（Child-Pugh C级）。
肾功能损害：中度肾功能损害（肌酐清除率 30–50 mL/min）也需要调整剂量，而严重肾功能损害（肌酐清除率 <30 mL/min）的数据有限。
主要注意事项
艾立布林的药代动力学不受年龄、体重或种族的影响。
由于其半衰期长，重复给药可能导致药物蓄积，因此需要监测毒性（例如，中性粒细胞减少症、周围神经病变）。
这些药代动力学特性支持其在晚期癌症中的临床应用，但需要根据肝肾功能障碍调整剂量以最大程度地降低毒性。更多详情，请参阅处方信息或临床研究。

肝毒性
艾立布林是一种细胞毒性化疗药物，在乳腺癌和脂肪肉瘤的周期性治疗中，血清转氨酶和碱性磷酸酶升高较为常见。艾立布林升高的发生率在8%至83%之间，其中2%至5%的患者ALT值超过正常值上限（ULN）的5倍。艾立布林临床试验报告中曾报道过ALT升高，但尚未公布其发生、临床特征和病程的详细信息，因此艾立布林在这些结果中的作用尚不明确。仅有零星提及“毒性肝炎”。尽管治疗期间血清酶升高发生率较高，但尚未有详细的临床表现明显的肝损伤病例报告，因此此类病例必定十分罕见。
可能性评分：E（未经证实但怀疑是肝损伤的原因）。

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妊娠和哺乳期影响
◉ 哺乳期用药概述
目前尚无关于艾立布林在哺乳期临床应用的信息。制造商建议在接受艾立布林治疗期间以及末次给药后 2 周内停止母乳喂养。
◉ 对母乳喂养婴儿的影响
截至修订日期，未找到相关已发表的信息。
◉ 对泌乳和母乳的影响
截至修订日期，未找到相关已发表的信息。

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蛋白质结合
49% 至 65%。

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艾立布林（甲磺酸艾立布林）是一种微管抑制剂，用于治疗转移性乳腺癌和脂肪肉瘤。虽然疗效显著，但它也伴有多种毒性，主要影响血液系统、神经系统和胃肠道系统。以下是其主要毒性的概述：
1. 血液学毒性
中性粒细胞减少症：最常见且剂量限制性毒性，发生率≥25%。据报道，高达57%的病例出现严重（3/4级）中性粒细胞减少症，增加感染风险。
贫血：常见（≥25%），部分病例需要输血支持。
血小板减少症：较少见，但严重病例可导致出血并发症。
2. 神经系统毒性
周围神经病变：常见不良事件（≥25%），表现为四肢麻木、刺痛或疼痛。其毒性可能与剂量相关，有时甚至不可逆。
疲劳：相当一部分患者报告出现疲劳，影响生活质量。
3. 胃肠道毒性
恶心和呕吐：常见（≥25%），但通常可用止吐药控制。
便秘：常见，有时需要医疗干预。
4. 其他毒性
脱发：脱发常见，但通常在停药后可逆。
心脏影响：有罕见的QT间期延长和心律失常病例报告，高危患者需要监测。
肝毒性：可能出现肝酶升高，尤其是在已有肝功能损害的患者中。

管理建议

剂量调整：严重中性粒细胞减少症、神经病变或肝/肾功能损害时需要调整剂量。


预防措施：中性粒细胞减少症可能需要生长因子支持（例如，粒细胞集落刺激因子，G-CSF），对于未解决的毒性反应，建议延迟给药。


艾立布林的毒性特征需要密切监测患者，尤其是有基础疾病的患者。剂量调整和支持治疗对于减轻不良反应并维持治疗效果至关重要。有关详细指南，请参阅处方信息。

[1]. Low-dose eribulin reduces lung metastasis of osteosarcoma in vitro and in vivo. Oncotarget. 2019 Jan 4; 10(2): 161-174.

[2]. Eribulin binds at microtubule ends to a single site on tubulin to suppress dynamic instability. Biochemistry, 2010. 49(6): p. 1331-7.

[3]. Inhibition of centromere dynamics by eribulin (E7389) during mitotic metaphase. Mol Cancer Ther, 2008. 7(7): p. 2003-11.

[4]. Eribulin induces irreversible mitotic blockade: implications of cell-based pharmacodynamics for in vivo efficacy under intermittent dosing conditions. Cancer Res, 2011. 71(2): p. 496-505.

艾立布林是一种完全合成的大环酮类似物，是海洋海绵天然产物艾立布林的衍生物。它通过基于微管蛋白的抗有丝分裂机制抑制微管的生长阶段，导致G2/M期细胞周期阻滞、有丝分裂纺锤体破坏，最终在长期有丝分裂阻滞后导致细胞凋亡。艾立布林具有抗肿瘤和微管去稳定作用。它是一种大环化合物，属于聚醚、多环醚、环酮、伯氨基化合物和环缩酮。它是艾立布林(1+)的共轭碱。
艾立布林是一种微管抑制剂，适用于治疗既往接受过至少两种化疗方案治疗转移性乳腺癌的患者。艾立布林是从海洋海绵冈田海绵（Halichondria okadai）中分离得到的。艾立布林（Eribulin）目前也在研究用于治疗晚期实体瘤。
艾立布林是一种微管抑制剂。其生理作用是通过抑制微管实现的。
艾立布林甲磺酸盐是一种微管功能抑制剂，被用作难治性转移性乳腺癌和脂肪肉瘤的抗肿瘤药物。尽管艾立布林对癌细胞具有细胞毒活性，但很少被报道会引起临床上明显的急性肝损伤。
艾立布林是哈利康德林B（一种源自海洋海绵（Lissodendoryx sp.）的具有抗肿瘤活性的物质）的类似物。与微管蛋白的长春花酸结构域结合，抑制微管蛋白聚合和微管组装，从而抑制有丝分裂纺锤体组装，诱导细胞周期停滞于 G2/M 期，并可能导致肿瘤消退。
另见：甲磺酸艾立布林（有盐形式）。

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药物适应症
用于治疗既往接受过至少两种化疗方案治疗转移性乳腺癌的转移性乳腺癌患者。
FDA 标签
适用于治疗至少接受过一种晚期疾病化疗方案治疗后病情进展的局部晚期或转移性乳腺癌患者（参见第 5.1 节）。哈拉文单药治疗。除非患者不适合接受蒽环类药物和紫杉烷类药物治疗，否则应包含这些药物。既往治疗。适用于治疗既往接受过蒽环类药物治疗（除非不适用）的不可切除的脂肪肉瘤成人患者（参见第5.1节）。哈拉文。
软组织肉瘤的治疗

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作用机制
抑制微管的生长相，但不影响其缩短相，并将微管蛋白隔离成无功能的聚集体。艾立布林通过基于微管蛋白的抗有丝分裂机制发挥作用，导致G2/M期细胞周期阻滞、有丝分裂纺锤体破坏，最终在长期有丝分裂阻滞后导致细胞凋亡。艾立布林。[FDA]

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药效学
线性

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是艾立布林与一当量甲磺酸反应得到的甲磺酸盐。艾立布林甲磺酸盐。一种完全合成的海洋海绵天然产物的大环酮类似物。通过基于微管蛋白的抗有丝分裂机制抑制微管生长阶段，导致 G2/M 期细胞周期阻滞、有丝分裂纺锤体破坏，最终在长期有丝分裂阻滞后导致细胞凋亡。它具有抗肿瘤和微管去稳定作用。它含有艾立布林(1+)。
是哈利康德林 B 的合成类似物的甲磺酸盐，哈利康德林 B 是一种源自海洋海绵（Lissodendoryx sp.）的具有抗肿瘤活性的物质。艾立布林与微管蛋白的长春花酸结构域结合，抑制微管蛋白的聚合和微管的组装，从而抑制有丝分裂纺锤体的组装，诱导细胞周期停滞于G2/M期，并可能导致肿瘤消退。
另见：艾立布林（含有活性部分）。

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艾立布林是一种小分子药物，其临床试验阶段最高为IV期（涵盖所有适应症），于2010年首次获批，目前有4种已获批适应症和18种在研适应症。

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本研究存在一些局限性。我们使用C3H小鼠作为同源转移模型，然而，本研究中引用的药代动力学数据是使用不同品系（BALB/c和CF-1）小鼠测得的。我们假设艾立布林在C3H小鼠体内的药代动力学与其他品系小鼠相似，因为静脉注射后大部分艾立布林未经代谢便经胆汁和尿液排出。Sampson等人报道，某些骨肉瘤细胞系在艾立布林存在下能够再生，但仍对艾立布林敏感[42]。我们并未检测LM8细胞在转移部位的延迟生长情况。LM8肺转移灶可能在长期使用艾立布林后增殖，因此，我们需要研究与其他化疗药物联合治疗的策略。总而言之，艾立布林是治疗骨肉瘤肺转移的潜在选择。其在低于IC50浓度下即可发挥抗转移作用，表明其具有广泛的应用前景。频繁低剂量艾立布林给药可长期减少肺转移，且副作用相对较少。[1]

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通过电镜观察，我们发现高浓度（50 μM）艾立布林不会像长春碱那样诱导微管末端发生广泛的原丝螺旋化（图5）。微管末端呈钝形或略微外展（表2）。这一发现支持了艾立布林与β-微管蛋白高亲和力结合、与α-微管蛋白低亲和力或无亲和力结合的模型，因此艾立布林不会像长春碱那样将微管蛋白异二聚体“连接”在一起（长春碱几乎以相同的亲和力结合两种亚基）。然而，微管末端略微外展的现象提示艾立布林可能与α-微管蛋白存在低亲和力结合。由于22%的艾立布林处理过的微管两端出现轻微的张开，因此，在足够高的浓度下，艾立布林可能与微管的负端结合。长春碱在低浓度艾立布林（≤ 5 μM）下抑制艾立布林与微管的结合（图4A和B）。出乎意料的是，在高浓度艾立布林存在下，长春碱反而增加了每个微管上的艾立布林结合位点数量，在2 μM和4 μM长春碱存在下，每个微管上的艾立布林分子数量分别从11个增加到14个和17个（图4A）。这种结合的轻微增加表明，长春碱诱导的原丝张开使得艾立布林更容易接触到微管末端的更多结合位点。 [2]

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与靶向微管的药物紫杉醇和长春花生物碱相比，艾立布林在化学结构上截然不同，它与微管的结合方式也与紫杉醇不同，并且它抑制微管动力学的方式也与紫杉醇和长春花生物碱不同。然而，在诱导有丝分裂停滞的浓度下，所有这些药物都会抑制着丝粒动力学。这些结果有力地支持了这样一种观点：这些药物对纺锤体微管动力学的抑制以及由此导致的染色体动粒/着丝粒张力的破坏是它们诱导有丝分裂停滞的主要机制。[3]

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总之，我们的结果表明，艾立布林能够诱导不可逆的有丝分裂阻滞，这可以从细胞层面解释其在体内疗效优于效力更强的ER-076349的原因。艾立布林不可逆的有丝分裂阻滞作用导致Bcl-2持续失活，进而诱导细胞凋亡并最终导致细胞活力长期丧失。与ER-076349相比，艾立布林的不可逆有丝分裂阻滞作用虽然导致细胞药物摄取量较低，但洗脱后药物滞留时间更长，尽管其背后的确切机制尚不清楚。艾立布林优先结合于微管末端少量高亲和力位点可能解释了其洗脱后药物滞留时间更长的原因，但仍需进一步研究证实。无论机制如何，艾立布林的不可逆性与洗脱后长期细胞活力丧失之间的相关性，为其在采用间歇给药的临床前肿瘤模型中体内疗效优于ER-076349提供了令人满意的解释。在正在进行的临床试验中，艾立布林采用间歇给药的方式进行给药。因此，该药物能够诱导癌细胞发生不可逆的有丝分裂阻滞，这可能对其临床活性具有重要的药效学意义，因为间歇给药会导致循环药物浓度波动。[4]

C₄₀H₅₉NO₁₁

729.90

729.408

C, 65.82; H, 8.15; N, 1.92; O, 24.11

253128-41-5

Eribulin mesylate;441045-17-6

11354606

White to off-white solid powder

1.29±0.1 g/cm3

1.584

3.88

146.39

2

12

4

52

1380

19

C[C@@H]1C[C@@H]2CC[C@H]3C(=C)C[C@@H](O3)CC[C@]45C[C@@H]6[C@H](O4)[C@H]7[C@@H](O6)[C@@H](O5)[C@@H]8[C@@H](O7)CC[C@@H](O8)CC(=O)C[C@H]9[C@H](C[C@H](C1=C)O2)O[C@@H]([C@@H]9OC)C[C@@H](CN)O

UFNVPOGXISZXJD-JBQZKEIOSA-N

InChI=1S/C40H59NO11/c1-19-11-24-5-7-28-20(2)12-26(45-28)9-10-40-17-33-36(51-40)37-38(50-33)39(52-40)35-29(49-37)8-6-25(47-35)13-22(42)14-27-31(16-30(46-24)21(19)3)48-32(34(27)44-4)15-23(43)18-41/h19,23-39,43H,2-3,5-18,41H2,1,4H3/t19-,23+,24+,25-,26+,27+,28+,29+,30-,31+,32-,33-,34-,35+,36+,37+,38-,39+,40+/m1/s1

(1S,3S,6S,9S,12S,14R,16R,18S,20R,21R,22S,26R,29S,31R,32S,33R,35R,36S)-20-[(2S)-3-amino-2-hydroxypropyl]-21-methoxy-14-methyl-8,15-dimethylidene-2,19,30,34,37,39,40,41-octaoxanonacyclo[24.9.2.13,32.13,33.16,9.112,16.018,22.029,36.031,35]hentetracontan-24-one

B1939; E7389; ER086526; Eribulin; 253128-41-5; Eribulin [INN]; eribuline; Eribulina; UNII-LR24G6354G; CHEBI:63587; LR24G6354G; B 1939; E 7389; ER 086526; B-1939; E-7389; ER-086526

2934.99.9001

Powder      -20°C    3 years

                     4°C     2 years

In solvent   -80°C    6 months

                  -20°C    1 month

注意： 请将本产品存放在密封且受保护的环境中（例如氮气保护），避免吸湿/受潮。

Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)

DMSO : ~200 mg/mL (~274.01 mM)

配方 1 中的溶解度: ≥ 5 mg/mL (6.85 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 40% PEG300 + 5% Tween80 + 45% Saline (这些助溶剂从左到右依次添加，逐一添加), 澄清溶液。
例如，若需制备1 mL的工作液，可将100 μL 50.0 mg/mL澄清DMSO储备液加入400 μL PEG300中，混匀；然后向上述溶液中加入50 μL Tween-80，混匀；加入450 μL生理盐水定容至1 mL。
*生理盐水的制备：将 0.9 g 氯化钠溶解在 100 mL ddH₂O中，得到澄清溶液。

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配方 2 中的溶解度: ≥ 5 mg/mL (6.85 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% (20% SBE-β-CD in Saline) (这些助溶剂从左到右依次添加，逐一添加), 澄清溶液。
例如，若需制备1 mL的工作液，可将 100 μL 50.0 mg/mL澄清DMSO储备液加入900 μL 20% SBE-β-CD生理盐水溶液中，混匀。
*20% SBE-β-CD 生理盐水溶液的制备（4°C，1 周）：将 2 g SBE-β-CD 溶解于 10 mL 生理盐水中，得到澄清溶液。

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配方 3 中的溶解度: ≥ 5 mg/mL (6.85 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% Corn Oil (这些助溶剂从左到右依次添加，逐一添加), 澄清溶液。
例如，若需制备1 mL的工作液，可将 100 μL 50.0 mg/mL 澄清 DMSO 储备液加入到 900 μL 玉米油中并混合均匀。

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请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解配方/方案：
1、请先配制澄清的储备液(如：用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液));
2、取适量母液，按从左到右的顺序依次添加助溶剂，澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明，并不一定代表此产品 的实际溶解配方):
10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline);
假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中，混合均匀/澄清；向上述体系中加入50 μL Tween-80，混合均匀/澄清；然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL；
3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例;
4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出，可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶;
5、为保证最佳实验结果，工作液请现配现用！
6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液，请查看说明书或联系我们;
7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。