| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
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| 5mg |
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| 10mg |
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| 25mg |
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| 50mg |
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| 100mg |
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| 250mg |
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| 500mg |
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| Other Sizes |
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| 靶点 |
TOPK (IC50 = 2.6 nM)
Mitogen-Activated Protein Kinase Kinases (TOPK/PBK) [2] |
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| 体外研究 (In Vitro) |
体外活性:OTS514 强烈抑制 TOPK 阳性癌细胞的生长。它还对卵巢癌细胞系显示出显着的生长抑制作用,IC50 值为 3.0 至 46 nM。 OTS514对5种肾癌细胞系VMRC-RCW、Caki-1、Caki-2、769-P和786-O具有生长抑制作用,其中TOPK高表达。 IC50 值范围为 19.9 至 44.1 nM 细胞测定:细胞在补充有 20% 胎牛血清和 1×StemSpan CC100 的 RPMI 中培养。用 OTS514(20 或 40 nM)或 OTS964(100 或 200 nM)处理细胞 48 小时。收集的细胞用PBS洗涤并重悬于100ml PBS中,随后用CD41a抗体在室温下染色20分钟。最后,再次用PBS洗涤细胞,然后通过流式细胞术分析CD41a染色。使用抗STAT5抗体通过蛋白质印迹检查STAT5的表达。
在一系列人骨髓瘤细胞系(HMCL)中,OTS514 在纳摩尔浓度下即可诱导细胞周期停滞和凋亡。[2] - 它能抑制多发性骨髓瘤(MM)患者来源的外周血单个核细胞中推定的 CD138⁺ 干细胞群的增殖。[2] - 在 MM 患者的骨髓细胞中,与 CD138⁻ 细胞亚群相比,OTS514 处理能优先杀伤恶性 CD138⁺ 浆细胞。[2] - OTS514 处理 HMCL 后,可上调 FOXO3 及其转录靶点 CDKN1A(p21)和 CDKN1B(p27)的表达,诱导细胞凋亡,降低 FOXM1 的表达,并破坏 AKT、p38 MAPK 和 NF-κB 信号通路。[2] - OTS514 的作用不受 p53 突变或缺失状态的影响。[2] - OTS514 与来那度胺联合处理 HMCL 时,产生协同的抗骨髓瘤效应。[2] - 对于 OTS514 耐药细胞系 8226 Dox40,在存在 10 µM 维拉帕米(可阻断 ABCB1 活性)的条件下培养,可恢复其对 OTS514 的敏感性。[2] - 经血清饥饿诱导 G1 期停滞的 MM1.S 和 U266 细胞,在解除饥饿后用 10 nM OTS514 处理 24 h,通过碘化丙啶染色流式细胞术分析显示细胞 DNA 含量发生改变。[2] - 用 100 nM OTS514 处理 HMCL 0-24 h,Western blot 检测显示 4 h 后出现半胱天冬酶介导的 PARP 切割(凋亡标志)。[2] - 用 OTS514 处理 MM1.S 和 U266 细胞 24 h,Western blot 分析显示 TOPK 蛋白水平呈剂量依赖性降低。[2] |
| 体内研究 (In Vivo) |
对人类肺癌细胞的小鼠异种移植研究证明了 OTS514 的体内功效,但发现该化合物也会引起严重的造血毒性 [红细胞 (RBC) 和白细胞 (WBC) 减少,并伴有血小板显着增加。与赋形剂对照相比,口服 OTS514 显着延长了 ES-2 腹部播散异种移植模型的总生存期(P < 0.001)。
在使用 NSG 小鼠(NOD/SCID/IL2Rg)建立的 H929 细胞侵袭性异种移植模型中,每周 5 次口服给予 100 mg/kg OTS514 耐受性良好。根据初始移植细胞量(1×10⁶ 或 2×10⁶ 个细胞)的不同,与对照组相比,OTS514 可使肿瘤体积缩小 48%-81%。[2] |
| 酶活实验 |
如前所述,通过蛋白质印迹检测TOPK的表达和组蛋白H3(Ser10)的磷酸化。用于蛋白质印迹的其他抗体如下:c-Src(1:1000)、Fyn(1:1000”)和Lyn(1:1000“)。使用细胞计数试剂盒-8通过比色测定法测量体外细胞存活率。将细胞(100μl)以产生连续线性生长的密度(A549,1×103个细胞;LU-99,2×103个电池;DU4475,4×103个手机;MDA-MB-231,3×103个电脑;T47D,3×104个手机;Daudi,5×103个汽车;UM-UC-3,1×105个手机;HCT-116,1×104个汽车;MKN1,2×104个电脑;MKN45,4×105个电脑;HepG2,4×107个电脑;MIAPaca-2,2×107个手机;22Rv1,6×103个;HT29,3×105个汽车)铺在96孔板中。在37°C下暴露于化合物72小时之前,让细胞粘附过夜。用分光光度计在450nm波长下读取板。所有检测均一式三份。在测量IC50值后,我们计算z分数以产生P值。在IC50值(nM)的对数转换(基数10)后,计算13个TOPK阳性细胞系的IC50对数值的平均值和SD。OTS514的平均值和标准差分别为0.76和0.23,OTS964分别为1.53和0.26。然后,根据HT29 IC50值,OTS514和OTS964的z得分分别为6.44和3.62[1]。
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| 细胞实验 |
人造血干细胞的体外分化[1]
从健康供体的生长因子动员外周血中纯化CD34+HSC,然后在添加了20%胎牛血清和1×StemSpan CC100的RPMI中培养细胞。用OTS514(20或40 nM)或OTS964(100或200 nM)处理细胞48小时。收集的细胞用磷酸盐缓冲盐水(PBS)洗涤,重新悬浮在100μl PBS中,然后在室温下用CD41a抗体染色20分钟。最后,再次用PBS洗涤细胞,然后在BD FACSCalibur上通过流式细胞术分析CD41a染色。用抗STAT5抗体通过蛋白质印迹检测STAT5的表达。 微阵列分析[2] 5×105 H929细胞用0.015%DMSO、15 nMOTS514、15µM来那度胺(LEN)或5 nM卡非佐米(CFZ)处理24小时。此外,还进行了每种活性药物组合(OTS514/LEN、OTS514/CFZ、OTS514/LEN/CFZ和LEN/CFZ)。使用Qiagen RNeasy迷你试剂盒提取来自三个独立实验(共24个样本)的RNA,并在芝加哥大学功能基因组学核心设施的两个人类HT12v4珠阵列上进行分析。使用分子特征数据库v6.1.27中的标志基因集对分位数标准化、背景减除的数据进行基因集富集分析(GSEA),28通过使用独创性途径分析生成上游调控因子分析。 细胞在补充有1×StemSpan CC100和20%胎牛血清的RPMI中培养。将细胞暴露于 OTS964(100 或 200 nM)或 OTS514(20 或 40 nM)48 小时。 PBS 洗涤并重悬于 100 毫升 PBS 后,使用 CD41a 抗体在室温下对收集的细胞染色 20 分钟。最终,细胞再进行一次 PBS 洗涤,然后进行流式细胞术分析 CD41a 染色。使用抗 STAT5 抗体,使用蛋白质印迹来测量 STAT5 表达。 MTT 法细胞活力检测:将人骨髓瘤细胞系(HMCL)与不同浓度的 OTS514 共同培养 72 h,采用 MTT 法评估细胞活力。对于 OTS514 耐药的 8226 Dox40 细胞系,同时加入 10 µM 维拉帕米以阻断 ABCB1 活性,再进行 MTT 检测。[2] - 细胞周期分析:将 MM1.S 和 U266 细胞经血清饥饿过夜诱导 G1 期停滞,解除饥饿后,分为未处理组和 10 nM OTS514 处理组,培养 24 h 后,采用碘化丙啶染色流式细胞术分析细胞 DNA 含量,以评估细胞周期分布。[2] - PARP 切割 Western blot 检测:用 100 nM OTS514 处理 HMCL 0-24 h,通过 Western blot 检测 PARP 切割情况,以评估细胞凋亡程度。[2] - TOPK 蛋白 Western blot 检测:用不同浓度 OTS514 处理 MM1.S 和 U266 细胞 24 h,通过 Western blot 分析 TOPK 蛋白表达水平,以观察药物对靶点蛋白的剂量依赖性影响。[2] - 患者来源细胞凋亡流式细胞术检测:将 MM 患者的骨髓单个核细胞与不同浓度的 OTS514 共同培养,18 h 后收集细胞,采用 Annexin V/PI 双染色流式细胞术分析 CD138⁺ 浆细胞亚群和 CD138⁻ 细胞亚群的晚期凋亡情况。[2] - CD138⁺ 细胞增殖抑制实验:将 MM 患者来源的外周血单个核细胞(PBMC)分为加或不加 5 ng/mL IL-3 和 IL-6、加或不加 10 nM OTS514 的各组,培养 6 天后,通过磁珠分选法分离 CD138⁺ 细胞,评估 OTS514 对 CD138⁺ 细胞增殖的抑制作用。[2] - 与来那度胺的协同作用实验:采用 MTT 法,分别用 OTS514、来那度胺以及两者的恒定比例组合(OTS514:来那度胺 = 1:6 和 1:12 摩尔当量)处理细胞,评估协同抗骨髓瘤效应。用不同浓度 OTS514 单独或联合来那度胺处理 H929 细胞 24 h,通过 Western blot 检测 IKAROS(IKZF1)、IRF4 和 FOXM1 的表达水平。此外,用 20 µM 来那度胺、100 nM OTS514 或两者组合处理 MM1.S 细胞,以 DMSO 为对照,采用 Amplex 红色过氧化物酶活性测定法检测相关活性。[2] - 下游信号通路 Western blot 分析:用不同浓度 OTS514 处理 H929、8226 和 KMS11 细胞 24 h,采用 LI-COR 近红外检测系统进行 Western blot 分析,评估 p21/p27 及其他相关蛋白的表达水平。用 15 nM OTS514 处理 H929、U266、MM1.S、8226 和 KMS11 细胞 24 h,采用磷酸化特异性抗体进行 Western blot 检测 IκBα、p38、AKT 和 FOXM1 的磷酸化水平,随后剥离膜并重新杂交以检测这些靶点的总蛋白水平。[2] |
| 动物实验 |
携带A549细胞异种移植模型的雌性BALB/cSLC-nu/nu小鼠[1]
1、2.5和5 mg/kg 静脉注射;每日一次,持续2周 体内异种移植研究[1] 将A549细胞(1 × 10⁷个细胞)或LU-99细胞(5 × 10⁶或1 × 10⁷个细胞)皮下注射到雌性BALB/cSLC-nu/nu小鼠左侧腹部。当A549异种移植瘤平均体积达到200 mm³或LU-99异种移植瘤平均体积达到150或200 mm³时,将动物随机分为6只一组。当对LU-99异种移植瘤进行较长时间(>14天)的肿瘤监测时,起始肿瘤体积设置为150 mm³,因为LU-99细胞生长速度极快,而200 mm³的起始体积会因动物伦理问题而限制观察时间(例如,接种200 mm³的LU-99肿瘤在第15天平均肿瘤体积达到约1100 mm³,而A549肿瘤在第15天达到约490 mm³)。静脉给药时,化合物配制于5%葡萄糖溶液中,经尾静脉注射。口服给药时,化合物(例如OTS514)配制于0.5%甲基纤维素溶液中,并按指定剂量和方案进行灌胃给药。两种给药途径的给药体积均为10 ml/kg体重。浓度在正文和图表中均有说明。肿瘤体积使用游标卡尺测量。通过公式“长×宽²×1/2”将结果转换为肿瘤体积(mm³)。小鼠体重在同一天测定,作为耐受性的指标。动物实验分别在KAC有限公司(A549异种移植瘤)和OncoTherapy Science公司(LU-99异种移植瘤)进行,均符合各机构的《实验动物饲养和使用指南》。肿瘤生长指数(TGI)根据公式[1 − (T − T0)/(C − C0)] × 100计算,其中T和T0分别为实验组第15天或第22天和第1天的平均肿瘤体积,C和C0分别为载体对照组的平均肿瘤体积。白细胞计数在KAC有限公司使用Sysmex XT-1800iV分析仪(Sysmex公司)或使用细胞计数板进行。血液采集于含EDTA的采血管中,以防止血液凝固并进行血细胞计数。 异种移植模型建立:使用NSG小鼠(NOD/SCID/IL2Rg)建立H929细胞异种移植模型,每组6只小鼠。[2] - 给药:当肿瘤体积达到100 mm³时,小鼠开始口服OTS514,剂量为100 mg/kg,每周5天。[2] - 监测:定期测量肿瘤体积以评估抗肿瘤效果,并在整个治疗过程中监测体重以评估耐受性。[2] |
| 毒性/毒理 (Toxicokinetics/TK) |
在小鼠异种移植模型中,每周 5 天口服 100 mg/kg 的 OTS514 耐受性良好,治疗期间体重保持稳定,未观察到明显不良反应。[2]
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| 参考文献 | |
| 其他信息 |
TOPK(T淋巴因子激活的杀伤细胞来源蛋白激酶)在多种癌组织中,包括肺癌和三阴性乳腺癌,均被高度且频繁地激活,并在癌细胞有丝分裂中发挥着不可或缺的作用。我们报道了一种强效TOPK抑制剂OTS964 {(R)-9-(4-(1-(二甲氨基)丙-2-基)苯基)-8-羟基-6-甲基噻吩并[2,3-c]喹啉-4(5H)-酮}的开发,该抑制剂能够以高亲和力和选择性抑制TOPK激酶活性。与TOPK小干扰RNA (siRNA)的敲低作用类似,该抑制剂在体外以及人肺癌异种移植模型中均能导致细胞分裂缺陷,并最终诱导癌细胞凋亡。尽管游离化合物的给药会诱发造血系统不良反应(白细胞减少伴血小板增多),但脂质体制剂给药可有效使小鼠移植肿瘤完全消退,且未观察到任何不良反应。我们的结果表明,抑制TOPK活性可能是治疗多种人类癌症的可行治疗方案。[1]
多发性骨髓瘤(MM)目前仍被认为是无法治愈的,因此亟需研发新的药物。有丝分裂激酶T-LAK细胞来源的蛋白激酶/PDZ结合激酶(TOPK/PBK)与多种癌症的肿瘤细胞增殖、癌症干细胞的维持以及患者预后不良密切相关。在本报告中,我们首次证实了TOPK抑制剂OTS514具有显著的抗骨髓瘤作用。 OTS514 在纳摩尔浓度下即可诱导一系列人骨髓瘤细胞系 (HMCL) 发生细胞周期阻滞和凋亡,并能抑制多发性骨髓瘤 (MM) 患者外周血单核细胞中假定的 CD138+ 干细胞群的增殖。在 MM 患者的骨髓细胞中,OTS514 处理对恶性 CD138+ 浆细胞的杀伤作用强于对 CD138- 浆细胞的杀伤作用。在侵袭性小鼠异种移植模型中,每周 5 天口服 100 mg/kg 的 OTS964 耐受性良好,且与对照组相比,肿瘤体积缩小了 48%-81%,具体缩小程度取决于初始移植瘤的大小。OTS514 处理 HMCL 后,FOXO3 及其转录靶点 CDKN1A (p21) 和 CDKN1B (p27) 的表达上调,并诱导了细胞凋亡。 TOPK抑制剂还能诱导FOXM1的丢失,并破坏AKT、p38 MAPK和NF-κB信号通路。OTS514的作用与p53突变或缺失状态无关。OTS514与来那度胺联合治疗HMCL可产生协同效应,这为在现有骨髓瘤治疗方案中评估TOPK抑制剂提供了理论依据。[2] OTS514是一种强效的TOPK抑制剂。TOPK/PBK(T-LAK细胞来源的蛋白激酶/PDZ结合激酶)与多种癌症的肿瘤细胞增殖、癌症干细胞的维持以及患者预后不良相关。 [2]多发性骨髓瘤(MM)被认为是无法治愈的,因此亟需研发新药。OTS514在临床前模型中显示出强大的抗骨髓瘤活性,这为评估TOPK抑制剂在现有骨髓瘤治疗方案中的应用提供了理论依据。[2] |
| 分子式 |
C21H20N2O2S
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|---|---|---|
| 分子量 |
364.46
|
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| 精确质量 |
364.124
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| 元素分析 |
C, 69.21; H, 5.53; N, 7.69; O, 8.78; S, 8.80
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| CAS号 |
1338540-63-8
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| 相关CAS号 |
OTS514 hydrochloride;2319647-76-0; OTS514;1338540-63-8; 1338544-87-8 (HBr); 1338545-92-8 (S-isomer HCl); 1338541-25-5 (s-isomer);
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| PubChem CID |
67448836
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| 外观&性状 |
Light yellow to yellow solid
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| 密度 |
1.3±0.1 g/cm3
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| 沸点 |
501.3±50.0 °C at 760 mmHg
|
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| 闪点 |
256.9±30.1 °C
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| 蒸汽压 |
0.0±1.3 mmHg at 25°C
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| 折射率 |
1.665
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| LogP |
3.25
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| tPSA |
104
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| 氢键供体(HBD)数目 |
3
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| 氢键受体(HBA)数目 |
4
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|
| 可旋转键数目(RBC) |
3
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| 重原子数目 |
26
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| 分子复杂度/Complexity |
522
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| 定义原子立体中心数目 |
1
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| SMILES |
Cl[H].S1C([H])=C([H])C2=C1C(N([H])C1C(C([H])([H])[H])=C([H])C(=C(C3C([H])=C([H])C(=C([H])C=3[H])[C@@]([H])(C([H])([H])[H])C([H])([H])N([H])[H])C=12)O[H])=O
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| InChi Key |
OETLNMOJNONWOY-LBPRGKRZSA-N
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| InChi Code |
InChI=1S/C21H20N2O2S/c1-11-9-16(24)17(14-5-3-13(4-6-14)12(2)10-22)18-15-7-8-26-20(15)21(25)23-19(11)18/h3-9,12,24H,10,22H2,1-2H3,(H,23,25)/t12-/m0/s1
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| 化学名 |
9-[4-[(2R)-1-aminopropan-2-yl]phenyl]-8-hydroxy-6-methyl-5H-thieno[2,3-c]quinolin-4-one
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| 别名 |
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| HS Tariff Code |
2934.99.9001
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| 存储方式 |
Powder -20°C 3 years 4°C 2 years In solvent -80°C 6 months -20°C 1 month |
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| 运输条件 |
Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)
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| 溶解度 (体外实验) |
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|---|---|---|---|---|
| 溶解度 (体内实验) |
配方 1 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (6.86 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 40% PEG300 + 5% Tween80 + 45% Saline (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。
例如,若需制备1 mL的工作液,可将100 μL 25.0 mg/mL澄清DMSO储备液加入到400 μL PEG300中,混匀;然后向上述溶液中加入50 μL Tween-80,混匀;加入450 μL生理盐水定容至1 mL。 *生理盐水的制备:将 0.9 g 氯化钠溶解在 100 mL ddH₂O中,得到澄清溶液。 配方 2 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (6.86 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% (20% SBE-β-CD in Saline) (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。 例如,若需制备1 mL的工作液,可将 100 μL 25.0 mg/mL澄清DMSO储备液加入900 μL 20% SBE-β-CD生理盐水溶液中,混匀。 *20% SBE-β-CD 生理盐水溶液的制备(4°C,1 周):将 2 g SBE-β-CD 溶解于 10 mL 生理盐水中,得到澄清溶液。 View More
配方 3 中的溶解度: ≥ 2.5 mg/mL (6.86 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% Corn Oil (这些助溶剂从左到右依次添加,逐一添加), 澄清溶液。 1、请先配制澄清的储备液(如:用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液)); 2、取适量母液,按从左到右的顺序依次添加助溶剂,澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明,并不一定代表此产品 的实际溶解配方): 10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline); 假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中,混合均匀/澄清;向上述体系中加入50 μL Tween-80,混合均匀/澄清;然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL; 3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例; 4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出,可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶; 5、为保证最佳实验结果,工作液请现配现用! 6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液,请查看说明书或联系我们; 7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。 |
| 制备储备液 | 1 mg | 5 mg | 10 mg | |
| 1 mM | 2.7438 mL | 13.7189 mL | 27.4379 mL | |
| 5 mM | 0.5488 mL | 2.7438 mL | 5.4876 mL | |
| 10 mM | 0.2744 mL | 1.3719 mL | 2.7438 mL |
1、根据实验需要选择合适的溶剂配制储备液 (母液):对于大多数产品,InvivoChem推荐用DMSO配置母液 (比如:5、10、20mM或者10、20、50 mg/mL浓度),个别水溶性高的产品可直接溶于水。产品在DMSO 、水或其他溶剂中的具体溶解度详见上”溶解度 (体外)”部分;
2、如果您找不到您想要的溶解度信息,或者很难将产品溶解在溶液中,请联系我们;
3、建议使用下列计算器进行相关计算(摩尔浓度计算器、稀释计算器、分子量计算器、重组计算器等);
4、母液配好之后,将其分装到常规用量,并储存在-20°C或-80°C,尽量减少反复冻融循环。
计算结果:
工作液浓度: mg/mL;
DMSO母液配制方法: mg 药物溶于 μL DMSO溶液(母液浓度 mg/mL)。如该浓度超过该批次药物DMSO溶解度,请首先与我们联系。
体内配方配制方法:取 μL DMSO母液,加入 μL PEG300,混匀澄清后加入μL Tween 80,混匀澄清后加入 μL ddH2O,混匀澄清。
(1) 请确保溶液澄清之后,再加入下一种溶剂 (助溶剂) 。可利用涡旋、超声或水浴加热等方法助溶;
(2) 一定要按顺序加入溶剂 (助溶剂) 。
Growth-inhibitory and cytotoxic effects of OTS514 for ovarian cancer cells freshly-isolated from patients.Clin Cancer Res.2016 Dec 15;22(24):6110-6117. th> |
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In vivoefficacy of OTS514 in ES-2 ovarian cancer peritoneal dissemination xenograft model.Clin Cancer Res.2016 Dec 15;22(24):6110-6117. td> |
TOPK expression levels, IC50values to TOPK inhibitors and suppression of FOXM1 in ovarian cancer cell lines.Clin Cancer Res.2016 Dec 15;22(24):6110-6117. td> |