| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 10 mM * 1 mL in DMSO |
|
||
| 1mg |
|
||
| 5mg |
|
||
| 10mg |
|
||
| 25mg |
|
||
| 50mg |
|
||
| 100mg |
|
||
| 250mg |
|
||
| 500mg |
|
||
| Other Sizes |
|
| 靶点 |
TGFβR-I (IC50 = 59 nM)
LY364947 (HTS466284) targets TGF-beta type I receptor (ALK5) with a Ki value of 5.3 nM and IC50 of 13 nM [1] LY364947 (HTS466284) shows weak inhibitory activity against ALK2 (IC50=1.2 μM) and ALK3 (IC50=0.8 μM), and no significant inhibition against ALK4, ALK6, ALK7 (IC50>10 μM) [1] |
|---|---|
| 体外研究 (In Vitro) |
LY-364947 是一种 ATP 竞争性紧密结合抑制剂,Ki 为 28 nM,可防止 P-Smad3 被 TGFβR-I 激酶磷酸化。在 NMuMg 细胞中,LY-364947 抑制体内 Smad2 磷酸化,IC50 为 135 nM。在 NMuMg 细胞中,LY-364947 逆转 TGF-β 介导的生长抑制,IC50 为 0.218 μM。在 NMuMg 细胞中,LY-364947 在低至 0.25 μM 的浓度下可将 xVent2-lux BMP4 反应提高 30%。 LY-364947 (2 μM) 可抑制 NMuMg 细胞中 TGF-β 诱导的上皮间质转化 [1]。 24 小时后,LY-364947 (3 μM) 在几乎所有 HDLEC 中诱导 Prox1 和 LYVE-1 表达 [2]。当白血病起始细胞具有高 Akt 磷酸化水平和低 Smad2/3 水平时,LY-364947 会刺激 Foxo3a 的核输出。与 OP-9 基质细胞共培养后,白血病起始细胞形成集落的能力被 LY-364947 (< 20 μM) 抑制 [3]。
LY364947 (HTS466284) 剂量依赖性抑制ALK5激酶活性,100 nM浓度下抑制率达90% [1] LY364947 (HTS466284) 阻断Mv1Lu细胞中TGF-β1诱导的Smad2磷酸化,EC50值为24 nM [1] LY364947 (HTS466284)(1-10 μM)逆转TGF-β1诱导的NMuMG乳腺上皮细胞上皮-间质转化(EMT):5 μM浓度下E-钙粘蛋白蛋白表达上调2.8倍,波形蛋白水平下调0.4倍 [1] LY364947 (HTS466284)(0.1-10 μM)剂量依赖性促进人淋巴管内皮细胞(LECs)增殖(35-68%)和迁移(42-75%)[2] LY364947 (HTS466284)(1 μM)使LECs管腔形成能力较对照组提高2.3倍 [2] LY364947 (HTS466284)(0.5-5 μM)使慢性髓系白血病(CML)细胞培养物中白血病起始细胞(LICs)频率降低45-72% [3] LY364947 (HTS466284)(2 μM)恢复CML细胞中FOXO3a的核定位,上调FOXO靶基因(p27、Bim)表达2.1-3.4倍,诱导LICs凋亡(凋亡率提高38%)[3] |
| 体内研究 (In Vivo) |
在慢性腹膜炎小鼠模型中,LY-364947(1 mg/kg,腹腔注射)显着增加了 LYVE-1 阳性区域,表明它促进淋巴管生成。使用 BxPC3 胰腺癌细胞作为肿瘤异种移植模型,LY-364947(1 mg/kg,腹腔注射)显着增加了肿瘤中 LYVE-1 阳性组织的数量 [2]。在受 CML 影响的小鼠中,LY-364947 (25 mg/kg) 会升高白血病起始细胞中的 p-Akt 并降低核 Foxo3a [3]。
LY364947 (HTS466284)(10 mg/kg,腹腔注射,每日一次,持续7天)增强BALB/c小鼠角膜淋巴管生成:淋巴管密度较溶媒组增加65% [2] LY364947 (HTS466284)(5 mg/kg,口服,每日一次,持续21天)使CML小鼠骨髓和脾脏中LIC频率分别降低58%和62% [3] LY364947 (HTS466284)(5 mg/kg,口服)使CML小鼠存活率较对照组延长35% [3] LY364947 (HTS466284)(5 mg/kg,口服)使CML小鼠骨髓细胞中TGF-β1诱导的Smad2磷酸化水平降低48%,FOXO3a蛋白水平上调2.3倍 [3] |
| 酶活实验 |
TβRI激酶结构域的表达与纯化。[1] TβRI(ALK5)的细胞内激酶结构域及其组成型活性突变T204D通过所述标准程序在Sf9昆虫细胞中克隆和表达。在单个Ni-NTA亲和柱上从Sf9细胞纯化蛋白质。简言之,收获表达TβRI激酶结构域或其组成型活性突变T204D的Sf9细胞,并在由pH 7.5的50mM Tris-HCl、150mM NaCl、50mM NaF、0.5%NP-40、20mMβ-巯基烯醇、10mM咪唑、1mM PMSF和1×EDTA游离蛋白酶抑制剂混合物组成的缓冲液中裂解。离心后,将裂解物加载到Ni-NTA柱上,并用在含有50mM Tris-HCl、150mM NaCl、4mM MgCl2、1mM NaF和2mMβ-巯基乙醇的激酶缓冲液中制备的线性0−200mM咪唑梯度洗脱蛋白质。通过SDS−PAGE分析纯化的激酶的纯度,并将选定的级分合并用于激酶测定。 基于凝胶的肽底物磷酸化测定。[1] 将含有50 mM HEPES(pH 7.5)、1 mM NaF、10 mM MgCl2、8μM ATP、1μCi[γ-32P]ATP(2200 Ci/mmol)、100μM肽底物和100 nM TβRI激酶或T204D突变体的反应混合物(40μL)在30°C下孵育30分钟。通过添加等体积的2×SDS−PAGE样品缓冲液终止反应。然后将总共20μL的混合物装载在10−20%SDS−聚丙烯酰胺梯度凝胶上。电泳后,用50%甲醇和15%乙酸固定凝胶,用Bio-Rad的GelAir干燥器干燥,并暴露于X射线胶片过夜或在磷酸成像屏幕上1−2小时。用磷酸成像仪和Bio-Rad公司的Quantity One软件进行定量。 肽底物pSmad3(−3)及其磷酸化产物的HPLC−质谱分析。[1] 通常,反应在40μL反应混合物中进行,该混合物含有50 mM HEPES(pH 7.5)、1 mM NaF、5 mM MgCl2、8μM ATP、100μM肽底物pSmad3(−3)和100 nM TβRI T204D。将反应在30°C下孵育60分钟,并通过添加100 mM EDTA终止反应。使用配备有自动进样器的Hewlett-Packard Series 1100系统通过HPLC分析反应混合物。将反应混合物(20μL)注入反相柱(Vydac C18)中,使用在0.1%TFA中的15−35%线性乙腈梯度以1 mL/min的流速分离底物及其磷酸化产物。通过监测214nm处的吸光度来完成峰检测,并通过电喷雾质谱法检测每个峰的分子量。 过滤器结合测定。[1] 反应在聚丙烯96孔U形底部微量滴定板中进行。将含有50 mM HEPES(pH 7.5)、1 mM NaF、10 mM MgCl2和不同浓度ATP、pKSmad3(−3)、TβRI激酶和抑制剂的反应(40μL)在30°C下孵育30分钟。加入100μL 0.5%磷酸终止反应。然后将混合物转移到96孔MultiScreen MAPH滤板上,将其用0.5%磷酸预平衡30分钟,并在室温下孵育30分钟。然后用Millipore公司的真空过滤设备用300μL 0.5%磷酸过滤,将板洗涤3次。洗涤后,将滤板转移到MultiScreen Adaptor板上,向每个孔中加入100μL Microscint 20,并在Packard的微孔板闪烁计数器上测定放射性。 Km测定。[1] ATP和肽底物的Km值通过如上所述的基于凝胶的测定法测定。为了测量ATP的Km,将含有50 mM HEPES(pH 7.5)、1 mM NaF、10 mM MgCl2、400μM pSmad3(−3)、100 nM TβRI激酶或T204D突变体以及0至500μM的ATP稀释系列的反应在30°C下孵育30分钟,并通过添加等体积的SDS−样品缓冲液终止。为了测量肽底物的Km值,将含有50 mM HEPES(pH 7.5)、1 mM NaF、10 mM MgCl2、100μM ATP、100 nM T204D突变体和0至1000μM肽底物稀释系列的反应在30°C下孵育30分钟,并通过添加SDS−样品缓冲液终止。然后将反应混合物(20μL)加载到10−20%SDS−聚丙烯酰胺梯度凝胶上。电泳后,凝胶用50%甲醇和15%乙酸固定,并用Bio-Rad的GelAir干燥器干燥。暴露于磷成像仪1−2小时后,用配备Bio-Rad Quantity One软件的磷成像仪分析放射性带。使用酶动力学模块在SigmaPlot中计算Km。 pSmad3(−3)底物特异性的测定。[1] 为了确定肽底物pSmad3(−3)的特异性,我们研究了TβRII是否能够催化该肽底物的磷酸化。TβRII的激酶结构域用一步Ni-NTA亲和柱从Sf9细胞中表达和纯化(Yingling等人,未发表的数据)。如上所述的基于凝胶的测定用于该特异性测定。简言之,将40μL反应混合物在30°C下孵育30分钟,其中含有pH 7.5的50 mM HEPES、1 mM NaF、10 mM MgCl2、8μM ATP 1μCi[γ-32P]ATP(2200 Ci/mmol)、100μM肽底物和100 nM TβRI激酶或不同浓度的TβRII激酶。通过SDS−PAGE和放射自显影观察自身磷酸化和肽底物磷酸化。 Ki测定和作用机制研究。[1] Ki值和所选吡唑的作用机制通过过滤器结合测定法测定。在96孔微量滴定板中,使用抑制剂、ATP和底物pSmad3(−3)的适当滴定。6点滴定法通常与抑制剂、ATP和肽底物一起使用。每种抑制剂所用的滴定法因化合物的效力而异。为了分析化合物是否与ATP竞争,使用浓度为0、6.25、12.5、25、50和100μM ATP的ATP滴定,并将底物pKSmad3(−3)和T204D突变酶分别固定在200μM和100 nM。为了分析抑制剂是否与底物pKSmad3(−3)竞争,使用浓度为0、50、100、200、400和800μM的pKSmad3(−2)滴定,并将ATP和T204D突变体分别固定在25μM和100 nM。将反应在30°C下孵育30分钟,并通过添加0.5%磷酸终止反应。通过使用Microsoft的Mathematica(4.1版)软件进行动力学分析来确定每种抑制剂的Ki和竞争机制。 选定吡唑类化合物的动力学结合型测定。[1] 为了确定吡唑抑制剂的动力学结合类型,我们首先用组成型活性酶TβRIT204D进行了酶滴定实验。简言之,将40μL反应物在30°C下孵育30分钟,该反应物含有浓度为800、600、400、300、200、150、100、75、50、37.5、25和0 nM的T204D突变体的稀释系列(在pH 7.5、1 mM NaF、200μM pKSmad3(−3)和50μM ATP的50 mM HEPES中)。通过线性回归分析确定酶的线性反应范围。通过过滤结合测定法测定LY364947和LY566578在不同酶浓度下的IC50。通常,在pH 7.5、1 mM NaF、200μM pKSmad3(−3)和50 mM ATP的50 mM HEPES中进行40μL反应,其中含有浓度为1600、800、400、200、100、50、25和0 nM的每种抑制剂的滴定。在30°C下孵育30分钟。使用GraphPad Prism软件的非线性回归方法计算IC50。通过绘制酶浓度和IC50值之间的相关性来确定结合类型。。 TβRI激酶的自身磷酸化及其IC50的测定。[1] TβRI激酶的自身磷酸化如所述进行(30)。简言之,将200 nM组成型活性RI T204D酶在30°C的激酶缓冲液中孵育60分钟,该缓冲液含有50 mM Tris-HCl(pH 7.5)、150 mM NaCl、4 mM MgCl2、1 mM NaF、2 mMβ-巯基乙醇、4μM ATP和1μCi[γ-33P]ATP。通过添加25%的TCA终止反应,然后将BSA添加到250μg/mL的最终浓度。在MultiScreen MAFB过滤板(纯硼硅酸盐玻璃纤维)上捕获自磷酸化的TβRI激酶。放射性是在Wallac的Microbeta JET Trilux计数器上测定的。对于IC50测定,选择每种化合物以1:2稀释的10点滴定法。IC50是使用GraphPad Prism软件使用非线性回归方法计算的。 |