dopamine D1 receptor; D5 receptor

体外活性：SKF38393 (50-100 μM) 以蛋白质合成依赖性方式诱导持久的突触增强。在体外大鼠前额皮质神经元中，SKF 38393 模拟 DA 对 I(NaP) 的影响，并调节持续的钠电流。在听觉皮层中，SKF38393 通过激活下游效应器腺苷酸环化酶和磷脂酶 C 显着的蛋白质组改变来影响长期记忆的形成和巩固。激酶测定：SKF 38393 salthalide 是一种 D1 激动剂，IC50 为 110 nM。

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儿茶酚胺、去甲肾上腺素和多巴胺（DA）存在于人类卵巢中；特别是在卵泡液中。去甲肾上腺素激活卵巢α和β肾上腺素受体并调节卵巢类固醇生成，但卵巢DA的意义尚不清楚。我们检查了D1亚型（D1-R）的DA受体是否存在于人类卵巢和培养的人类颗粒黄体细胞（GC）中。使用RT-PCR，我们从成人卵巢和GC信使RNA中克隆了与人类D1-R序列相同的互补DNA。在卵巢切片中，在大窦卵泡的颗粒细胞、黄体细胞以及培养的GC中鉴定出D1-R蛋白（通过免疫组织化学）。在Western印迹中使用相同的抗血清在培养的黄素化GC中发现了约50000 Mr的免疫反应带。这些细胞中的D1-R是功能性的，因为DA单独或在β受体拮抗剂普萘洛尔存在的情况下会引起细胞收缩。选择性D1-R激动剂SKF-38393诱导了细胞形态的类似变化，并增加了培养基cAMP的水平。然而，SKF-38393未能在体外显著影响基础和hCG刺激的孕酮释放，表明D1-R的激活与人类GC的主要类固醇孕酮的合成没有直接联系。雌二醇的合成同样不受影响。使用RT-PCR和免疫组织化学，我们发现GC表达DA和cAMP调节的Mr 32000磷酸化蛋白（DARPP-32），这是一种通常与携带D1-R的神经元相关的蛋白。综上所述，DA和功能性DA受体以及DARPP-32的存在表明，人类卵巢中存在一种涉及DA的新的生理调节途径[2]。

SKF 38393（6 mg/kg，腹腔注射）可防止东莨菪碱引起的 T 迷宫工作记忆任务表现受损。在成年雄性 NMRI 小鼠中，SKF38393（1 μg/小鼠）会损害情境依赖性恐惧学习。

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在这项研究中，研究人员检查了多巴胺能（D1）受体激动剂SKF-38393 HCl（SKF）对MPTP诱导的多巴胺能神经元损伤的可能神经保护作用。MPTP被单胺氧化酶-B（MAO-B）转化为其神经毒性代谢产物1-甲基-4-苯基吡啶鎓（MPP+），然后被多巴胺能神经元吸收。SKF-38393对纹状体中的总氧化酶或单胺氧化酶B均无影响。SKF-38393阻断了MPTP诱导的谷胱甘肽耗竭，并减轻了MPTP引起的多巴胺耗竭。此外，它增强了超氧化物歧化酶的活性，从而模拟了司来吉兰的作用。这些研究的结果被解释为表明，SKF-38393可能被证明是治疗帕金森病的一种有价值的药物。[3]

SKF 38393 saltloride 是 D1 的激动剂，IC50 为 110 nM。
使用定量放射自显影检查碘化SCH 23390、125I-SCH 23982（杜邦NEN）在大鼠脑切片中与多巴胺D1受体结合的效力、选择性以及解剖和神经元定位。125I-SCH 23982以非常高的亲和力（Kd值为55-125pM）、特异性（70-85%的结合被5微摩尔顺式氟戊噻醇取代）和可饱和的方式（Bmax值为65-176fmol/mg蛋白）结合基底节中的D1位点。选择性D1拮抗剂SCH 23390（IC50=90 pM）和顺式氟戊噻醇（IC50=200 pM）以及D1激动剂SKF 38393（IC50=110 nM）取代了特异性125I-SCH 23982结合，但D2选择性配体（I-舒必利，LY 171555）或S2拮抗剂西那塞林没有取代。与3H-SCH 23390相比，125I-SCH 23882对D1位点的亲和力提高了5到10倍，比放射性提高了50倍，使其成为标记D1受体的优秀放射性配体。D1位点的浓度在内侧黑质中最高，超过外侧黑质、尾壳核、伏隔核、嗅结节和内脚核中D1位点浓度的50%以上。较低浓度的D1位点存在于内囊、背内侧额叶皮层、屏状核和新皮层第6层。腹侧被盖区缺失D1位点。纹状体注射保留轴突的神经毒素喹啉酸，分别使同侧尾壳核和黑质内侧和中央网状部可移位D1位点的浓度减少87%和46-58%。黑质外侧未见D1位点丢失。用6-羟基多巴胺破坏高达94%的中脑多巴胺能投射并没有减少D1结合，也没有增加纹状体或黑质D1受体浓度，只有一个例外。125I-SCH 23982以皮摩尔亲和力选择性标记纹状体神经元上的D1结合位点，这些神经元包含大鼠大脑中的大部分D1位点[1]。

细胞系：GC细胞
浓度：10 μmol/L
孵育时间：1小时
结果：诱导Mr 32 kD (DARPP-32)的DA-和cAMP-调节的磷蛋白的苏氨酸磷酸化增加培养GC细胞。

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蛋白质印迹[2]
如前所述进行蛋白质印迹，但稍作修改。简而言之，收集细胞，冷冻、解冻，在含有10%蔗糖和2%SDS的62.5 mmol/L Tris-HCl缓冲液（pH 6.8）中均质化，超声处理，并在10%巯基乙醇存在下加热（95℃5分钟）。样品（15μg/泳道）在10%或12.5%SDS-聚丙烯酰胺凝胶（SDS-PAGE）上进行电泳分离。将蛋白质转移到硝化纤维膜上，并用用于免疫组织化学的相同D1-R抗血清（1:1000稀释，在4℃下孵育过夜）进行检测。

此外，使用特征明确的单克隆磷酸-DARPP-32特异性抗体（1:500）检测用DA（1和10μmol/L）或SKF-38393（1和1μmol/L，RBI，Biotrend，Cologne，Germany，稀释于无血清培养基中）处理GC（1小时，2例，24小时）是否改变了DARPP-32的磷酸化。为了控制目的，将β受体拮抗剂普萘洛尔（10μmol/L）或D1-R拮抗剂SCH-23390（10μmol/L，RBI）添加到用DA或SKF-38393（在1μm处使用）处理的细胞中。监测并记录细胞形态。如所述，使用过氧化物酶标记的抗血清（1:3000）和增强化学发光检测免疫反应性。在某些情况下，印迹被数字化，并使用NIH Image程序的编辑版本确定条带的积分光密度，如前所述。

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免疫沉淀实验[2]
进行免疫沉淀实验，以检查SKF-38393（100μmol/L，在无血清培养基中稀释）处理培养的GC（分离后1天）1小时是否会增加DARPP-32的苏氨酸磷酸化。移除培养基，将细胞溶解在含有10 mmol/L NaH2PO4、150 mmol/L NaCl、2 mmol/L EDTA、1%Triton X-100、0.25%SDS、1%脱氧胆酸钠和2 mmol/L苯基甲磺酰氟的缓冲液中。为了进行免疫沉淀，我们使用了标记有抗鼠IgG的磁珠和磁分离。首先将珠子与正常小鼠血清（5%在含有10 mmol/L EGTA、250 mmol/L蔗糖和0.1%BSA的PBS中）一起孵育，然后用2μL特征明确的针对牛DARPP-32的单克隆抗体标记，该抗体可识别灵长类动物DARPP-32，也用于免疫细胞化学。随后，将珠子与150μL GC细胞裂解液在室温下孵育1小时，然后在4℃下孵育30分钟。磁铁分离后，将小球洗涤几次并用于SDS-PAGE，如所述。使用抗磷酸苏氨酸的单克隆抗体（1:100）进行印迹；在某些情况下，它们是通过密度测定法进行评估的。

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孕酮和雌二醇测量[2]
在hCG（10IU/mL）存在或不存在的情况下，通过GC与SKF-38393（10μmol/L）一起孵育6小时，使用三个孔对每种处理（n=3）检测孕酮和雌二醇在培养基中的释放情况。按照制造商的说明，使用商业酶免疫测定法对样品进行分析。批内变异系数在5-8%之间，批间变异系数不超过10%。所有孵育和移液步骤以及激素浓度的计算都在全自动免疫诊断分析仪中进行。对细胞蛋白的微小变化进行了校正。方差分析和t检验用于评估结果。

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cAMP的测定[2]
在磷酸二酯酶抑制剂异丁甲基黄嘌呤（1 mmol/L）的存在下，用SKF-38393（1-100μmol/L）孵育3或6小时后，检测分离后1天GC培养基中cAMP的水平。在一项初步研究中，SKF-38393（浓度为1μmol/L）导致cAMP小幅但无统计学意义的增加（比基础水平高20%）。因此，对于三个独立的附加实验，使用了更高的SKF-38393浓度（100μmol/L）。根据制造商的说明，这些样品是使用酶免疫测定法（R&D Systems）测量的。该测定的灵敏度为0.5 pmol/mL，批内变异系数小于10%。为了校正细胞密度的微小差异，每微克细胞蛋白表达cAMP结果。学生t检验用于评估数据。

Balb/c小鼠每16小时腹腔注射5或10 mg/kg的SKF-38393，最后一次给药在MPTP给药前30分钟进行。注射生理盐水但其他处理方式相同的实验组小鼠作为对照组。为了避免生物胺、酶和抗氧化分子内源性水平的昼夜变化，动物于清晨被断头处死。将SN和NCP组织进行微穿孔，并在pH 7.8的0.1 M磷酸盐缓冲液中用玻璃-聚四氟乙烯匀浆器进行匀浆。组织匀浆液在4℃下以10000×g离心60分钟。取上清液测定GSH含量以及SOD和CAT的活性。[3]

溶于生理盐水；6 mg/kg；腹腔注射

雄性Wistar大鼠

[1]. Picomolar affinity of 125I-SCH 23982 for D1 receptors in brain demonstrated with digital subtraction auto radiography. J Neurosci. 1987 Jan;7(1):213-222.

[2]. Functional Dopamine-1 Receptors and DARPP-32 Are Expressed in Human Ovary and Granulosa Luteal Cells in Vitro. J Clin Endocrinol Metab. 1999 Jan;84(1):257-64.

[3]. SKF-38393, a dopamine receptor agonist, attenuates 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine-induced neurotoxicity. Brain Res. 2001 Feb 23;892(2):241-7.

[4]. The D1 dopamine receptor agonist SKF-38393 stimulates the release of glutamate in the hippocampus. Neuroscience. 1999;94(4):1063-70.

一种主要用作研究工具的选择性D1多巴胺受体激动剂。

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碘标记的SCH 23390，即125I-SCH 23982（杜邦-NEN），采用定量放射自显影技术检测了其在大鼠脑切片中与多巴胺D1受体结合的效力、选择性以及解剖学和神经元定位。125I-SCH 23982与基底神经节中的D1位点结合具有极高的亲和力（Kd值为55-125 pM）、特异性（5 μM顺式氟哌噻吨可置换70-85%的结合），且呈饱和结合模式（Bmax值为65-176 fmol/mg蛋白）。选择性D1受体拮抗剂SCH 23390（IC50 = 90 pM）和顺式氟哌噻吨（IC50 = 200 pM）以及D1受体激动剂SKF-38393（IC50 = 110 nM）可取代¹²⁵I-SCH 23982的特异性结合，但D2受体选择性配体（¹²⁵I-舒必利、LY 171555）或S2受体拮抗剂西那色林则无此作用。与³H-SCH 23390相比，¹²⁵I-SCH 23982对D1受体的亲和力高5～10倍，比放射性高50倍，使其成为标记D1受体的优良放射性配体。 D1受体的浓度在黑质内侧部最高，比黑质外侧部、尾状核壳核、伏隔核、嗅结节和内侧苍白球的浓度高出50%以上。内囊、背内侧额叶皮层、屏状核和新皮层第6层中D1受体的浓度较低。腹侧被盖区未检测到D1受体。纹状体内注射轴突保护性神经毒素喹啉酸后，同侧尾状核壳核和黑质网状部内侧部及中央部的可置换D1受体浓度分别降低了87%和46-58%。黑质外侧部的D1受体未见减少。用6-羟基多巴胺破坏高达94%的中脑纹状体多巴胺能投射，并未降低D1受体的结合，除一个例外，也未增加纹状体或黑质的D1受体浓度。125I-SCH 23982以皮摩尔级的亲和力选择性地标记纹状体黑质神经元上的D1受体结合位点，而这些神经元含有大鼠脑内大部分的D1受体位点。[1]帕金森病（PD）的特征是黑质纹状体多巴胺能神经元的进行性退化。线粒体呼吸抑制、羟自由基的产生以及导致氧化应激的自由基防御机制减弱等多种因素被认为与多巴胺能神经元的退化有关。 1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氢吡啶 (MPTP) 处理的动物模型是帕金森病 (PD) 的有效实验模型，能够展现该疾病的大部分临床特征以及主要的生化和病理症状。本研究探讨了多巴胺能 (D1) 受体激动剂 SKF-38393 HCl (SKF) 对 MPTP 诱导的多巴胺能神经元损伤的潜在神经保护作用。MPTP 经单胺氧化酶 B (MAO-B) 转化为其神经毒性代谢物 1-甲基-4-苯基吡啶鎓 (MPP+)，后者随后被多巴胺能神经元摄取。SKF-38393 对纹状体中的总 MAO-B 或 MAO-B 均无影响。 SKF-38393 阻断了 MPTP 诱导的谷胱甘肽耗竭，并减弱了 MPTP 诱导的多巴胺耗竭。此外，它还增强了超氧化物歧化酶的活性，从而模拟了司来吉兰的作用。这些研究结果表明，SKF-38393 可能是一种治疗帕金森病的有效药物。[3] 本研究旨在更好地评估多巴胺在胞吐作用中的作用。由于腺苷酸环化酶的直接激活（例如，使用福斯克林）可增强神经递质的释放，因此我们感兴趣的是，激活与腺苷酸环化酶正向偶联的 D1 型多巴胺受体是否也能调节突触小泡融合和神经递质释放的分子机制。为了回答这个问题，我们研究了D1型多巴胺受体激动剂SKF-38393对培养的大鼠海马神经元自发释放谷氨酸的影响。SKF-38393增强了河豚毒素耐受性兴奋性突触后电流的频率，但并未增强其幅度，这表明D1受体的作用位点位于突触前。D1多巴胺受体拮抗剂SCH-23390以及蛋白激酶A抑制剂H-7和Rp-cAMP均能阻断这种效应，而百日咳毒素则对多巴胺能反应没有影响。此外，卡巴胆碱和钌红也能刺激胞吐作用，但不能阻断SKF-38393诱导的调节作用。这些结果表明，SKF-38393 通过一种对百日咳毒素不敏感且依赖于蛋白激酶 A 的机制，在突触前增强谷氨酸的释放，该机制很可能涉及 D1 型多巴胺受体。我们的结果强调了蛋白激酶 A 作为突触传递的强效调节因子的重要性，并提示高浓度的多巴胺可以显著增强海马中谷氨酸的释放。[4]

C16H18CLNO2

291.77

291.102

C, 65.86; H, 6.22; Cl, 12.15; N, 4.80; O, 10.97

62717-42-4

SKF 38393 hydrobromide; 20012-10-6; (R)-SKF 38393 hydrochloride; 81702-42-3; 62751-59-1 (R-isomer); 67287-49-4; 62717-42-4 (HCl)

147514

Light yellow to khaki solid powder

3.506

52.49

4

3

1

20

291

0

Cl[H].O([H])C1=C(C([H])=C2C([H])([H])C([H])([H])N([H])C([H])([H])C([H])(C3C([H])=C([H])C([H])=C([H])C=3[H])C2=C1[H])O[H]

YEWHJCLOUYPAOH-UHFFFAOYSA-N

InChI=1S/C16H17NO2.ClH/c18-15-8-12-6-7-17-10-14(13(12)9-16(15)19)11-4-2-1-3-5-11;/h1-5,8-9,14,17-19H,6-7,10H2;1H

5-phenyl-2,3,4,5-tetrahydro-1H-3-benzazepine-7,8-diol;hydrochloride

2934.99.9001

Powder      -20°C    3 years

                     4°C     2 years

In solvent   -80°C    6 months

                  -20°C    1 month

注意： 请将本产品存放在密封且受保护的环境中，避免吸湿/受潮。

Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)

配方 1 中的溶解度: ≥ 2.08 mg/mL (7.13 mM) (饱和度未知) in 10% DMSO + 90% (20% SBE-β-CD in Saline) (这些助溶剂从左到右依次添加，逐一添加), 澄清溶液。
例如，若需制备1 mL的工作液，可将100 μL 20.8 mg/mL澄清DMSO储备液加入900 μL 20% SBE-β-CD生理盐水溶液中，混匀。
*20% SBE-β-CD 生理盐水溶液的制备（4°C，1 周）：将 2 g SBE-β-CD 溶解于 10 mL 生理盐水中，得到澄清溶液。

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请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解配方/方案：
1、请先配制澄清的储备液(如：用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液));
2、取适量母液，按从左到右的顺序依次添加助溶剂，澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明，并不一定代表此产品 的实际溶解配方):
10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline);
假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中，混合均匀/澄清；向上述体系中加入50 μL Tween-80，混合均匀/澄清；然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL；
3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例;
4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出，可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶;
5、为保证最佳实验结果，工作液请现配现用！
6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液，请查看说明书或联系我们;
7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。