System xc- (cystine/glutamate antiporter, SLC7A11/SLC3A2). [1][6]
Keap1 (Kelch-like ECH-associated protein 1). L-cystine treatment increases Nrf2 protein half-life from 19.4 min to 30.9 min. [6]
FliY-YecSC (ABC transporter, high affinity, Km = 110 nM). [5]
YdjN (low affinity symporter, Km = 1.1 µM). [5]
Cystine is a dimer of cysteine and is involved in the formation of disulfide bonds in proteins. It is a component of proteins and is essential for their stability and proper folding. It is also used in the body to create glutathione, an important antioxidant.

在肝细胞癌Huh6和Huh7细胞中，系统xc抑制剂（柳氮磺胺吡啶、erastin）在生理浓度为83 µM的L-胱氨酸培养基中的生长抑制作用强于在200 µM的商业培养基中的生长抑制作用。RSL3（GPX4抑制剂）未显示出差异。在Huh7细胞中，柳氮磺胺吡啶在83 µM L-胱氨酸培养基中的GI50为209 µM，而在200 µM L-胱氨酸培养基中的GI50为371 µM。[1] 在HeLa细胞中，L-胱氨酸（0.1-1.6 mM）可剂量依赖性地增加Nrf2蛋白的表达，其中0.8 mM的效果最佳。时间进程研究表明，Nrf2在30分钟内即可被诱导，并在4小时达到峰值。 [6] RNA-seq 和 RT-PCR 结果表明，L-胱氨酸（0.8 mM，16 小时）上调了多个 Nrf2 下游基因（NQO1、HMOX1、GCLC、GCLM、SRXN1、TXNRD1、AKR1C1 和 OSGIN1）的表达，其中 OSGIN1 的诱导作用最强。[6] L-胱氨酸以剂量依赖的方式激活了 ARE-荧光素酶报告基因（mGST-ARE 和 hNQO1-ARE）。[6] L-胱氨酸处理（0.8 mM，4 小时）使 Nrf2 蛋白的半衰期从 19.4 分钟延长至 30.9 分钟，并降低了 Nrf2 的泛素化水平。 [6] 在大肠杆菌中，鉴定出两种L-胱氨酸转运蛋白：YdjN（低亲和力，Km = 1.1 µM，Vmax = 14.7 pmol [10^9 cells]^-1 min^-1）和FliY-YecSC（高亲和力，Km = 110 nM，Vmax = 6.41 pmol [10^9 cells]^-1 min^-1）。ΔydjNΔyecS突变体不能以L-胱氨酸作为唯一硫源生长。[5] L-胱氨酸（0.8 mM，16 h）可降低H2O2诱导的ROS生成，并保护HeLa细胞免受H2O2或阿霉素诱导的细胞凋亡，siRNA敲低实验表明，该作用依赖于Nrf2。 [6] 在大肠杆菌中，fliY 或 ydeD 基因的缺失会增加 H2O2 胁迫下的脂质过氧化作用（MDA 水平比野生型高 2.1-2.3 倍）。[5] L-半胱氨酸处理不会改变 Nrf2 或 Keap1 的 mRNA 水平。[6] L-半胱氨酸不能诱导 Nrf2 的表达。[6] 胱氨酸对于蛋白质中二硫键的形成至关重要，有助于维持蛋白质的稳定性和正确折叠。它是一种非必需氨基酸。胱氨酸可用作抗氧化剂，保护组织免受辐射和污染的侵害。它还能刺激造血系统，促进白细胞和红细胞的生成。

在大鼠中，静脉注射L-[^35S]胱氨酸后，血浆放射性消失呈双相曲线，快速半衰期为7 ± 1分钟，慢速半衰期为104 ± 5分钟。肾皮质细胞内L-[^35S]胱氨酸的峰值积累（分布比14.2）在30分钟时达到。[4]
大鼠肾皮质中L-[^35S]胱氨酸的代谢产物包括胱氨酸、半胱氨酸、还原型谷胱甘肽和一种未鉴定的化合物（可能是牛磺酸、半胱氨酸亚磺酸盐或胱氨酸）。血浆中仅检测到胱氨酸。[4]
输尿管结扎对大鼠肾脏中L-胱氨酸代谢产物的细胞积累没有显著影响。 L-赖氨酸（450 µmol）与L-胱氨酸联合给药可增强细胞内³⁵S产物的积累并增加胱氨酸的清除率（15-30分钟时的分数清除率为24.0 ± 0.7%，而未联合赖氨酸时为4.02 ± 0.52%）。[4]
在一名胱氨酸病患者中，通过FTIR、OPTIR和AFM-IR对肾脏活检进行分析，发现微米级和纳米级均存在L-胱氨酸（六边形形态）和L-半胱氨酸（矩形形态）晶体。 [3]
在大肠杆菌中，Hpx-ΔydeDΔfliY突变细胞（缺乏Cys/CySS穿梭系统）用膜不透性H2O2探针染色后，周质空间（约占细胞的11%）中显示出H2O2的积累。[5]
胱氨酸在胱氨酸病（一种溶酶体贮积症）患者的溶酶体中积累。它与肾脏范可尼综合征和肾小球功能丧失有关。胱氨酸在体内用于合成谷胱甘肽。

大肠杆菌中L-胱氨酸的摄取测定：收集生长至对数生长期中期的细胞，用KPM溶液（10 mM MgSO4，0.1 M K2HPO4，pH 6.5）洗涤，并重悬至OD660 = 0.4。将细胞悬液用D-葡萄糖活化，于37°C孵育10分钟。加入指定浓度的L-[^14C]-胱氨酸启动摄取。室温孵育10分钟后，用GF/C滤膜过滤收集细胞，洗涤三次，并通过液体闪烁计数法测定放射性。初始摄取速率至少在20分钟内呈线性关系。使用Hanes-Woolf作图法计算动力学参数（Km，Vmax）。 [5]
周质H₂O₂检测：将细胞用1 mM五氟苯磺酰基-2',7'-二氟尿苷（BES-H₂O₂，一种细胞不渗透性荧光探针）在室温下染色30分钟。洗涤后，在荧光显微镜下观察染色细胞（激发波长485 nm，发射波长530 nm）。染色模式分为无染色、胞质染色和周质染色。[5]
脂质过氧化（TBARS）测定：收集细胞，加入TBARS溶液（0.01%丁基羟基甲苯、20%三氯乙酸、0.65%硫代巴比妥酸）。将样品在100℃加热25分钟，冷却，离心，并在532 nm处测定吸光度。根据标准曲线计算MDA当量浓度。 [5]
胱氨酸可通过无细胞实验评估其形成二硫键的能力和抗氧化活性。然而，其特异性的酶促或受体结合实验尚未得到充分研究。其在蛋白质稳定性中的作用可通过生化方法进行研究。

细胞活力检测（CellTiter-Glo）：将细胞接种于96孔板（2000个细胞/孔）。24小时后，更换培养基，加入含有200 µM或83 µM L-胱氨酸以及指定药物的培养基。细胞分别用柳氮磺胺吡啶（Huh6细胞培养72小时，Huh7细胞培养24小时）、erastin（72小时）或RSL3（72小时）处理。使用CellTiter-Glo试剂盒检测细胞活力。GI50定义为使细胞活力降低50%的剂量。[1] PI染色检测细胞膜通透性：处理后，用PBS洗涤细胞，并在黑暗中用1 µg/mL碘化丙啶孵育30分钟。采集明场和荧光图像（激发/发射波长535/617 nm）。每组随机选取三张图像，计算PI阳性细胞的百分比。 [1]
脂质过氧化（C11-BODIPY）：处理后，加入1 µM C11-BODIPY探针，于37°C孵育30分钟。用胰蛋白酶消化收集细胞，并通过流式细胞仪检测5000个细胞的荧光强度（激发/发射波长488/525 nm）。[1]
Western blot检测Nrf2蛋白：用含5% 2-巯基乙醇的Laemmli样品缓冲液收集细胞。将样品煮沸、超声处理，进行SDS-PAGE电泳分离，转移至PVDF膜，然后分别与抗Nrf2、抗Keap1、抗HMOX1、抗SRXN1、抗TXNRD1、抗AKR1C、抗GAPDH或抗泛素抗体孵育，最后与HRP标记的二抗孵育。 [6]
ARE 报告基因检测：将 pGL4.37-mGST-ARE luc 或 pGL4.37-hNQO1-ARE luc 载体与 pCMV Renilla 荧光素酶载体共转染至细胞中。转染 24 小时后，用 L-胱氨酸或 SFN 处理细胞 16 小时。使用 Dual-Glo 荧光素酶检测试剂盒测定萤火虫荧光素酶和 Renilla 荧光素酶活性。[6]
泛素化检测：将细胞用 0.8 mM L-胱氨酸或 5 µM SFN 以及 10 µM MG132 处理 4 小时。用含 1% SDS 的 TBS 缓冲液裂解细胞。煮沸后，将裂解液稀释，并用蛋白 A/G 琼脂糖珠进行预清除。将Nrf2与抗Nrf2抗体在4℃下孵育过夜进行免疫沉淀，然后用Protein A/G磁珠捕获。洗脱免疫沉淀的蛋白，并进行Western blot分析以检测泛素。[6]
活性氧（ROS）检测（DCFDA）：细胞用0.8 mM L-胱氨酸预处理16小时，然后在黑暗中用10 µM DCFDA孵育30分钟。加入H₂O₂，用酶标仪测量DCF荧光强度（激发/发射波长485/535 nm）。[6]
Caspase-3/7活性测定：细胞在裂解缓冲液（0.5% Nonidet P-40，0.5 mM EDTA，150 mM NaCl，50 mM Tris，pH 7.5）中裂解。将细胞裂解液与 80 µM Ac-DEVD-AMC 底物在 37°C 下孵育 1 小时。测量荧光强度（激发/发射波长 365/450 nm）。[6]
MTT 法检测细胞活力：将细胞用 L-胱氨酸处理 8 小时，然后用阿霉素处理 24 小时。加入 MTT (2 mg/mL) 孵育 2 小时。将生成的甲臜溶解于酸化的异丙醇中，并在 570 nm 处测量吸光度。[6]
siRNA 转染：使用 Lipofectamine 3000 将对照 siRNA 或 Nrf2 siRNA 转染至细胞中。6 小时后，加入含 20% FBS 的 DMEM 培养基培养 18 小时，然后更换为新鲜培养基培养 48 小时，之后进行 L-胱氨酸处理。 [6]
利用CRISPR-Cas9技术敲除Keap1：将Keap1 CRISPR/Cas9敲除质粒转染至HeLa细胞。通过流式细胞术分选GFP阳性细胞，并以单细胞密度接种于细胞中以进行克隆形成实验。通过Western blot验证Keap1敲除。检测五个克隆（KO1-KO5）对L-胱氨酸的反应。[6]
实时定量RT-PCR：将总RNA（1 µg）反转录为cDNA。使用SYBR Green Master Mix和针对Nrf2、Keap1、NQO1、HMOX1、GCLM、TXNRD1、SRXN1、AKR1C1、OSGIN1、GAPDH或18S rRNA的特异性引物进行qPCR。使用∆CT法计算mRNA丰度。 [6]
在基于细胞的检测中评估胱氨酸，以研究其在蛋白质折叠和氧化还原调控中的作用。用胱氨酸处理细胞，并测量其对谷胱甘肽水平和蛋白质稳定性的影响。此外，还在胱氨酸病模型中对其进行研究。

L-胱氨酸蓄积大鼠模型：成年雄性Sprague-Dawley大鼠（150-250 g）经静脉注射L-[³⁵S]胱氨酸（1.6 mM，每只大鼠1.14 µCi）。在指定时间点（0-90分钟），将大鼠麻醉并断头处死。采集血液，取出肾脏。将肾脏切成两半，并用Stadie-Riggs切片机进行连续切片。从外极到外髓质各取4片切片。评估细胞内和细胞外放射性。计算分布比（每毫升细胞内液每分钟计数/每毫升血浆每分钟计数）。[4]
输尿管结扎：在麻醉下，将左侧输尿管在肾盂下方结扎。1小时（或10分钟）后，向大鼠注射L-[³⁵S]胱氨酸。 45分钟（或10分钟）后取组织。[4]
清除率研究：大鼠用硫喷妥钠麻醉。进行气管切开术、膀胱插管和颈静脉插管。输注10%甘露醇（溶于0.9%氯化钠溶液）。[甲氧基-³H]菊粉作为启动和维持输注。采集对照尿样后，大鼠接受静脉注射L-[³⁵S]胱氨酸（1.6 mM，8.0 µCi），同时或不同时注射L-赖氨酸（450 µmol）。收集三次15分钟的尿液，并在中点采集血样。计算分数清除率（胱氨酸/菊粉）。[4]
在动物模型中，胱氨酸被用于研究其在蛋白质代谢和抗氧化防御中的作用。它已被用于胱氨酸病模型的研究。然而，具体的动物实验方案尚未得到充分记录。

大鼠静脉注射L-[³⁵S]胱氨酸后，血浆中L-[³⁵S]胱氨酸的放射性强度下降，快速半衰期为7 ± 1分钟，慢速半衰期为104 ± 5分钟。[4]
注射L-[³⁵S]胱氨酸后，在大鼠血浆中检测到的唯一³⁵S标记化合物是胱氨酸。[4]
胱氨酸的分子量为240.30，分子式为C₆H₁₂N₂O₄S₂，CAS号为56-89-3。该化合物为白色结晶性粉末，微溶于水。

在 HeLa 细胞中，浓度高达 1.6 mM 的 L-胱氨酸可诱导 Nrf2 表达，且未观察到明显的毒性。[6] 在大肠杆菌中，L-胱氨酸转运蛋白基因（ydjN、yecS、fliY）的缺失并不影响正常条件下的生长，但会增加其对 H₂O₂ 胁迫的敏感性（延长滞后期）。[5] L-胱氨酸被认为是一种无毒的氨基酸衍生物，适用于细胞保护，且安全性良好。[6] 目前尚无关于胱氨酸的详细毒性数据。该化合物是一种天然存在的氨基酸，通常被认为安全。它被用于科研和营养应用。

[1]. Extracellular Concentration of L-Cystine Determines the Sensitivity to System xc- Inhibitors. Biomol Ther (Seoul). 2022 Mar 1;30(2):184-190.

[2]. Enhancement of antigen-specific immunoglobulin G production in mice by co-administration of L-cystine and L-theanine. J Vet Med Sci. 2007 Dec;69(12):1263-70.

[3]. Cystinuria and cystinosis are usually related to L-cystine: is this really the case for cystinosis? A physicochemical investigation at micrometre and nanometre scale. Comptes Rendus. Chimie, Volume 25 (2022) no. S1, pp. 489-502.

[4]. Cellular accumulation of L-cystine in rat kidney cortex in vivo. J Clin Invest. 1973 Feb;52(2):454-62.

[5]. Uptake of L-cystine via an ABC transporter contributes defense of oxidative stress in the L-cystine export-dependent manner in Escherichia coli. PLoS One. 2015 Apr 2;10(3):e0120619.

[6]. Fresh Medium or L-Cystine as an Effective Nrf2 Inducer for Cytoprotection in Cell Culture. Cells. 2023 Jan 12;12(2):291.

在胱氨酸尿症（常染色体隐性遗传病）中，L-胱氨酸晶体呈现六方晶系形态，与其晶体结构（六方晶系，P6₁22空间群）一致。[3]
在胱氨酸病（溶酶体贮积症）中，异常沉积物此前被认为是纯L-胱氨酸，但实际上呈现矩形晶体形态。纳米尺度的物理化学研究（OPTIR、AFM-IR）表明，L-胱氨酸和L-半胱氨酸均存在，提示胱氨酸病与L-半胱氨酸的矩形晶体有关，这些晶体会发生相变转化为L-胱氨酸。[3]
在大肠杆菌中，Cys/CySS穿梭系统（YdeD输出蛋白和FliY-YecSC输入蛋白）向周质空间提供还原当量以清除H₂O₂，从而保护膜脂免受过氧化作用。两种转运蛋白均受H₂O₂诱导：ydeD（3.5倍）、fliY（2.5倍）、yecS和yecC（2倍）。[5] L-胱氨酸通过胱氨酸/谷氨酸反向转运蛋白（SLC7A11）进入细胞。这种摄取可被erastin和柳氮磺胺吡啶阻断。进入细胞后，L-胱氨酸被还原为L-半胱氨酸，用于GSH合成或蛋白质生成。[5][6] 新鲜的DMEM培养基（含0.2 mM L-胱氨酸）可诱导HeLa、HEK293、AC16和MCF7细胞中Nrf2蛋白的表达。单独使用L-胱氨酸可产生这种效应，而L-半胱氨酸、葡萄糖或谷氨酰胺则不能。 [6]

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L-半胱氨酸是含硫氨基酸半胱氨酸的L-对映异构体。它可用作面粉处理剂、人体代谢产物、酿酒酵母代谢产物、小鼠代谢产物以及EC 1.2.1.11（天冬氨酸半醛脱氢酶）抑制剂。它是L-半胱氨酸的半胱氨酸衍生物，也是一种非蛋白质L-α-氨基酸。它是L-半胱氨酸阴离子的共轭酸。它是D-半胱氨酸的对映异构体。它是L-半胱氨酸两性离子的互变异构体。它是一种共价连接的二聚体，是由半胱氨酸氧化形成的非必需氨基酸。两个半胱氨酸分子通过二硫键连接形成半胱氨酸。L-半胱氨酸存在于大肠杆菌（K12菌株、MG1655菌株）中或由其产生。据报道，西班牙鼠尾草、大豆和其他一些具有相关数据的生物体中含有L-半胱氨酸。胱氨酸并非20种必需氨基酸之一。胱氨酸是一种含硫衍生物，由半胱氨酸的硫醇侧链氧化形成。它具有抗氧化特性，能够保护组织免受辐射和污染损伤，并延缓衰老过程。它还参与蛋白质合成。胱氨酸在骨组织和皮肤中的许多蛋白质中含量丰富，也存在于胰岛素和消化酶中，例如嗜铬原A、木瓜蛋白酶和胰蛋白酶原。(NCI04)
胱氨酸是一种共价连接的二聚体，由半胱氨酸氧化形成，属于非必需氨基酸。两个半胱氨酸分子通过二硫键连接形成胱氨酸。

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药物适应症
据称L-半胱氨酸具有抗炎特性，可以对抗多种毒素，并可能有助于治疗骨关节炎和类风湿性关节炎。在L-半胱氨酸获准用于治疗上述任何疾病之前，还需要进行更多研究。迄今为止的研究主要集中在动物模型上。

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作用机制
在某些情况下，例如对乙酰氨基酚过量，肝脏中的谷胱甘肽会耗竭，使组织承受氧化应激，并导致细胞完整性丧失。L-半胱氨酸是合成谷胱甘肽的主要前体。

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药效学
L-半胱氨酸是一种共价连接的二聚体，是由半胱氨酸氧化形成的非必需氨基酸。两个半胱氨酸分子通过二硫键连接形成胱氨酸。胱氨酸是尿液中天然存在的化学物质；当胱氨酸沉积在肾脏时，会形成结石（坚硬的矿物质沉积物）。胱氨酸是由两个半胱氨酸分子通过二硫键连接而成的化合物。胱氨酸对于维生素B6的正常利用至关重要，它还有助于烧伤和伤口的愈合，并能分解支气管炎和囊性纤维化等疾病中的粘液沉积。胱氨酸还有助于胰岛素向胰腺的供应，这对于碳水化合物和淀粉的吸收至关重要。它可以提高肺、肝、肾和骨髓中的谷胱甘肽水平，这可能通过减少老年斑等方式对身体产生抗衰老作用。
胱氨酸是一种天然存在的氨基酸，其CAS号为56-89-3。它对蛋白质中二硫键的形成至关重要。胱氨酸会在胱氨酸病患者的溶酶体中积聚。它被用于研究蛋白质结构和代谢。它是一种天然存在的化合物。

C6H12N2O4S2

240.29

240.023

C, 29.99; H, 5.03; N, 11.66; O, 26.63; S, 26.68

56-89-3

L-Cystine-d4;1192736-38-1;L-Cystine-34S2;113512-08-6;(S)-L-Cystine-15N2;L-Cystine-3,3'-13C2;2483736-13-4

67678

White to off-white solid powder

1.6±0.1 g/cm3

468.2±45.0 °C at 760 mmHg

260-261ºC

237.0±28.7 °C

0.0±2.5 mmHg at 25°C

1.653

1.23

177.24

4

8

7

14

192

2

C([C@@H](C(=O)O)N)SSC[C@@H](C(=O)O)N

LEVWYRKDKASIDU-IMJSIDKUSA-N

InChI=1S/C6H12N2O4S2/c7-3(5(9)10)1-13-14-2-4(8)6(11)12/h3-4H,1-2,7-8H2,(H,9,10)(H,11,12)/t3-,4-/m0/s1

(2R)-2-amino-3-[[(2R)-2-amino-2-carboxyethyl]disulfanyl]propanoic acid

NSC-13203; L-cystine; 56-89-3; L-Dicysteine; beta,beta'-Dithiodialanine; NSC 13203; Cystine

2934.99.9001

Powder      -20°C    3 years

                     4°C     2 years

In solvent   -80°C    6 months

                  -20°C    1 month

Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)

0.1 M NaOH : ~3.33 mg/mL (~13.86 mM)
0.1 M HCL : 2.5 mg/mL (~10.40 mM)
DMSO :< 1 mg/mL
H2O : < 0.1 mg/mL

注意: 如下所列的是一些常用的体内动物实验溶解配方，主要用于溶解难溶或不溶于水的产品（水溶度<1 mg/mL）。 建议您先取少量样品进行尝试，如该配方可行，再根据实验需求增加样品量。

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注射用配方1: DMSO : Tween 80： Saline = 10 : 5 : 85 (如： 100 μL DMSO → 50 μL Tween 80 → 850 μL Saline)
*生理盐水/Saline的制备：将0.9g氯化钠/NaCl溶解在100 mL ddH ₂ O中，得到澄清溶液。
注射用配方 2: DMSO : PEG300 ：Tween 80 : Saline = 10 : 40 : 5 : 45 (如： 100 μL DMSO → 400 μL PEG300 → 50 μL Tween 80 → 450 μL Saline)
注射用配方 3: DMSO : Corn oil = 10 : 90 (如： 100 μL DMSO → 900 μL Corn oil)
示例: 以注射用配方 3 (DMSO : Corn oil = 10 : 90) 为例说明, 如果要配制 1 mL 2.5 mg/mL的工作液, 您可以取 100 μL 25 mg/mL 澄清的 DMSO 储备液，加到 900 μL Corn oil/玉米油中, 混合均匀。

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注射用配方 4: DMSO : 20% SBE-β-CD in Saline = 10 : 90 [如：100 μL DMSO → 900 μL (20% SBE-β-CD in Saline)]
*20% SBE-β-CD in Saline的制备（4°C，储存1周）：将2g SBE-β-CD (磺丁基-β-环糊精) 溶解于10mL生理盐水中，得到澄清溶液。
注射用配方 5: 2-Hydroxypropyl-β-cyclodextrin : Saline = 50 : 50 (如： 500 μL 2-Hydroxypropyl-β-cyclodextrin (羟丙基环胡精)→ 500 μL Saline)
注射用配方 6: DMSO : PEG300 : Castor oil : Saline = 5 : 10 : 20 : 65 (如： 50 μL DMSO → 100 μL PEG300 → 200 μL Castor oil → 650 μL Saline)
注射用配方 7: Ethanol : Cremophor : Saline = 10： 10 : 80 (如： 100 μL Ethanol → 100 μL Cremophor → 800 μL Saline)
注射用配方 8: 溶解于Cremophor/Ethanol (50 : 50), 然后用生理盐水稀释。
注射用配方 9: EtOH : Corn oil = 10 : 90 (如： 100 μL EtOH → 900 μL Corn oil)
注射用配方 10: EtOH : PEG300：Tween 80 : Saline = 10 : 40 : 5 : 45 (如： 100 μL EtOH → 400 μL PEG300 → 50 μL Tween 80 → 450 μL Saline)

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口服配方 1: 悬浮于0.5% CMC Na (羧甲基纤维素钠)
口服配方 2: 悬浮于0.5% Carboxymethyl cellulose (羧甲基纤维素)
示例: 以口服配方 1 (悬浮于 0.5% CMC Na)为例说明, 如果要配制 100 mL 2.5 mg/mL 的工作液, 您可以先取0.5g CMC Na并将其溶解于100mL ddH2O中，得到0.5%CMC-Na澄清溶液；然后将250 mg待测化合物加到100 mL前述 0.5%CMC Na溶液中，得到悬浮液。

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口服配方 3: 溶解于 PEG400 (聚乙二醇400)
口服配方 4: 悬浮于0.2% Carboxymethyl cellulose (羧甲基纤维素)
口服配方 5: 溶解于0.25% Tween 80 and 0.5% Carboxymethyl cellulose (羧甲基纤维素)
口服配方 6: 做成粉末与食物混合

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注意: 以上为较为常见方法，仅供参考， InvivoChem并未独立验证这些配方的准确性。具体溶剂的选择首先应参照文献已报道溶解方法、配方或剂型，对于某些尚未有文献报道溶解方法的化合物，需通过前期实验来确定（建议先取少量样品进行尝试），包括产品的溶解情况、梯度设置、动物的耐受性等。

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请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解配方/方案：
1、请先配制澄清的储备液(如：用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液));
2、取适量母液，按从左到右的顺序依次添加助溶剂，澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明，并不一定代表此产品 的实际溶解配方):
10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline);
假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中，混合均匀/澄清；向上述体系中加入50 μL Tween-80，混合均匀/澄清；然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL；
3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例;
4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出，可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶;
5、为保证最佳实验结果，工作液请现配现用！
6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液，请查看说明书或联系我们;
7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。