WP1066

JAK2; STAT3

WP10666 以剂量依赖性方式极大地抑制了 HEL 细胞的增殖。 2.3 μM 是抑制 HEL 细胞生长的 IC50 值。当 WP1066 存在时，具有 JAK2 V617F 突变同工型的人类 HEL 细胞无法增殖 [1]。当WP1066用于阻断p-STAT3时，CTX对肿瘤的细胞毒作用增强。在 B16 细胞上，WP1066 的 IC50 剂量为 2.43 μM (0.865 μg/mL)[2]。在高浓度下，WP1066 抑制正常 BM 祖细胞的生长，抑制 AML 母细胞集落形成细胞的增殖，并抑制 AML 集落形成细胞的增殖 [3]。

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WP1066显著抑制JAK2及其下游转录-3信号转导和激活因子、转录-5信号转导和激活因子以及细胞外信号调节的激酶-1/2通路，并呈剂量和时间依赖性。结果表明，低微摩尔浓度的WP1066对HEL细胞具有时间和剂量依赖性的抗增殖和促凋亡作用。正如预期的那样，WP1066以剂量依赖的方式抑制携带JAK2 V617F突变的真性红细胞增多症患者外周血造血祖细胞的增殖。 结论：我们的数据表明，WP1066在体外和离体均具有活性，应进一步开发用于治疗表达JAK2 V617F突变的肿瘤。[1]

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WP1066阻断p-STAT3可增强CTX对肿瘤的细胞毒作用[2]
为了确定CTX和WP1066是否对肿瘤的直接细胞毒性有累加作用，我们分别和联合对黑色素瘤细胞系B16进行了IC50评估。WP1066和CTX对B16细胞的IC50剂量分别为2.43µM（0.865µg/ml）和4.04 mM （1.128 mg/ml）。使用IC50剂量的WP1066(2µM)，添加CTX增强肿瘤细胞毒性（图1A）。B16具有p-STAT3的组成激活（图1B）和诱导活性36。为了确定CTX是否与WP1066对p-STAT3的抑制产生叠加效应，我们将B16细胞培养在WP1066、CTX或两者均存在或不存在的情况下，并通过Western blot分析评估p-STAT3、总STAT3和β-actin的水平。在B16细胞中，WP1066对p-STAT3的抑制作用在CTX的作用下呈剂量依赖性增强。具体来说，0.75或2.5 mg/ml的CTX与2.5µM的WP1066联合使用对pSTAT3的抑制作用与单独使用5µM的WP1066相似。这表明CTX可以与WP1066联合增强对p-STAT3的抑制，但在这些剂量下不能直接抑制p-STAT3（图1B）。

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由于(E)-3（6-溴吡啶-2-基）-2-氰- n- （（s0 -1-苯乙基）丙烯酰胺）（WP1066）是JAK2抑制剂AG490的新型类似物，我们测试了其在AML细胞中的活性并研究了其作用机制。通过克隆实验，我们发现尽管WP1066对正常骨髓祖细胞有边际作用，但它抑制了从新诊断的AML患者获得的AML集落形成细胞以及AML细胞系OCIM2和K562的增殖。WP1066通过诱导细胞在细胞周期的G0-G1期积累来抑制OCIM2细胞的增殖。与亲本化合物AG490相似，WP1066抑制JAK2的磷酸化，但与AG490不同的是，WP1066也降解JAK2蛋白，从而阻断其下游信号转导和转录激活因子（STAT）和磷酸肌醇-3激酶途径。这些作用导致了半胱天冬酶途径的激活。WP1066在OCIM2和K562细胞中激活caspase-3，诱导聚adp -核糖聚合酶裂解，引起caspase依赖性凋亡细胞死亡。因此，WP1066是一种有效的JAK2抑制剂，其在AML和其他血液系统恶性肿瘤中的作用值得进一步研究。[3]

在肿瘤微环境中，WP1066 (30 mg/kg, og) 对 CTX 诱导的 p-STAT3 通路抑制具有累加效应 [2]。

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WP1066不能进一步增强环磷酰胺对肺黑色素瘤病变的治疗作用[2]
为了确定CTX和WP1066是否对肺内黑色素瘤具有累加性疗效，在患有肺黑色素瘤的C57BL/6J小鼠中单独或联合使用节律性CTX （o.g）、细胞毒性CTX （i.p）或WP1066 （o.g）。为了观察STAT3抑制和CTX的叠加效应，使用了亚治疗剂量（30 mg/kg）的WP1066。未处理荷瘤小鼠黑色素瘤病变数为26.8±11.3个。虽然经WP1066亚治疗剂量处理的小鼠肺部病变的发展与未处理的小鼠之间没有统计学差异（33±16.1）（P> 0.05），但以节拍器和细胞毒方法给药的CTX与对照组相比减少了肺病变的数量(7±3.5 P= 0.049和0.7±0.6；P= 0.01)。使用细胞毒性CTX剂量比使用节拍性CTX剂量对黑色素瘤病变数量的减少更为显著（P= 0.03）。然而，与单独使用节拍（7.8±3.6）或细胞毒性（0.5±0.6）CTX剂量的组相比，联合治疗组没有观察到加性效应（图2）。

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WP1066确实增强了环磷酰胺对中枢神经系统黑色素瘤的治疗效果[2]
为了确定节拍器CTX剂量和WP1066联合治疗是否对已建立的中枢神经系统肿瘤产生附加益处，采用先前描述的方法治疗脑内B16的C57BL/6J小鼠。用WP1066对照或PBS治疗的荷瘤小鼠的中位总生存时间为16天(范围：13-21天；n = 10)。单独使用亚治疗性WP1066剂量未观察到中位生存时间(15天；范围：10-18天；n = 7;P= 0.29)或单独给药(18天；范围17-36天；n = 10;P= 0.1)。中位总生存期21天(范围17-75天；n=10)，与对照组小鼠（P=0.004）和单独使用WP1066治疗的小鼠（P<0.0001）相比，与单独使用节拍器CTX治疗的小鼠（P= 0.13）相比，这一差异具有统计学意义（图3A）。

接下来，我们确定了细胞毒性CTX剂量与WP1066联合使用的效果。用WP1066对照或PBS治疗的荷瘤小鼠的中位总生存时间为17天(范围：13-17天；n = 9)。单独使用亚治疗性WP1066剂量未观察到中位生存时间的改善(17.5天；范围：14-21天；n = 8;P = 0.10)。与对照相比，细胞毒性CTX单药治疗显著提高了生存期(32天；范围：24-108天；P < 0.0001)。用亚治疗性WP1066剂量和细胞毒性CTX剂量治疗脑内黑色素瘤小鼠的中位生存时间为120天(范围：26-127天；n=7)，明显长于单独使用细胞毒性CTX剂量（P= 0.03）、WP1066 （P=0.0001）和对照组（P=0.0002）的小鼠（图3B）。在WP1066和细胞毒性CTX联合治疗的小鼠中，57%的小鼠长期存活，当实验终止进行肿瘤再攻毒实验时，与单独使用细胞毒性CTX组相比，中位生存时间至少增加了375%。在死亡时，中枢神经系统尸检显示，治疗组之间的肿瘤负荷没有显著差异。死亡通常继发于B16肿瘤的脑膜外扩散和继发脑积水。这将阻止测量肿瘤大小和收集Western Blot分析。

为了确定WP1066和细胞毒性或定时剂量的CTX治疗的小鼠脑肿瘤是否能够产生持久的保护性免疫记忆，将B16细胞植入小鼠的对侧半球。再攻毒后，将亚治疗性WP1066剂量与节律性或细胞毒性CTX剂量联合治疗的小鼠的中位生存时间分别为17天和21天，与naïve对照组小鼠的中位生存时间没有显著差异。各治疗组脑内再挑战实验后均未见持久免疫。

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WP1066不能进一步增强CTX 免疫介导的细胞毒作用[2]
为了确定是否存在与联合治疗的体内疗效相关的免疫肿瘤细胞毒性增强，我们评估了针对B16黑色素瘤细胞的免疫细胞毒性反应。用WP1066处理的非荷瘤小鼠和荷瘤小鼠的脾细胞，节律性（g。）CTX剂量，细胞毒性(p)给CTX或WP1066与CTX联合分离，与cfse标记的B16靶细胞共培养48小时，以评估对B16细胞的免疫细胞毒性。与非荷瘤对照组相比，荷瘤小鼠免疫介导的细胞毒性降低了37% （P =0.008）。WP1066、定时CTX和细胞毒性CTX分别使荷瘤小鼠的CD3+ T细胞、自然杀伤细胞（NK）细胞和NKT细胞（脾细胞）的细胞毒清除率比荷瘤小鼠分别提高30%、77%和69% （P = 0.05、P= 0.001和P= 0.006）。然而，与单药治疗相比，WP1066与节拍剂或细胞毒性CTX联合治疗并没有显著增强免疫介导的B16靶细胞的细胞毒性清除（图4A）。

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WP1066不能进一步调节CTX对免疫细胞群的影响[2]
测定节拍器（ogg）在体内的作用。CTX剂量，细胞毒性(p)CTX给药、WP1066给药以及联合治疗对荷瘤小鼠CD8+、CD4+和CD4+Foxp3+ treg数量的影响，按上述方法治疗14天。与对照荷瘤小鼠相比，节拍CTX剂量增加了CD8+ (P= 0.007)（图4B）和CD4+ T细胞（P= 0.04）（图4C）的数量，抑制了CD4细胞室内treg的数量（P<0.05）（图4D）。节律给药CTX和亚治疗性WP1066联合给药并没有进一步增加CD8+（图4B）或CD4+ T细胞（图4C）的数量，也没有进一步抑制外周血中CD4+FoxP3+ Tregs的数量（P >.05）（图4D）。相比之下，与荷瘤小鼠相比，细胞毒性CTX剂量显著抑制CD8+ T细胞（P< 0.0001）（图4B）， CD4+ T细胞（P= 0.0005）（图4C）和CD4+FoxP3+ Tregs (P=0.0004)（数据未显示），并且WP1066没有进一步调节（P> 0.05）。

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WP1066对肿瘤微环境中CTX抑制p-STAT3通路具有加性作用[2]
为了阐明为什么CTX与WP1066在中枢神经系统黑色素瘤的疗效实验中存在叠加效应，但其程度远低于肺部，我们研究了局部肿瘤微环境中pSTAT3的水平及其在联合治疗中的调节。采用免疫组织化学方法检测各组黑色素瘤核内p-STAT3的表达，并以p-STAT3阳性细胞的百分比表示。细胞质黑色素的存在不包括在分析中。在对照小鼠的中枢神经系统黑色素瘤中，p-STAT3的表达量为12.7±2.3%(范围2.8-21.8%；N = 8)。这一比例降至9.2±2.8%(范围2.3-18.7%；N = 9；P=0.170)。节拍器CTX不影响p-STAT3表达12.7±3.7%(范围4.6-37.2%；n = 8) p-STAT3表达。在细胞毒性CTX治疗的CNS肿瘤小鼠中，p-STAT3水平为4.5±1.2%(范围1.9-10.7%；N = 7；P=0.011)，联合WP1066进一步降低至2.3±0.8%(范围0-6.5%；N = 7；P=0.001)（图5A）。与此形成鲜明对比的是，在对照组，已建立的肺黑色素瘤中，p-STAT3的表达较低，为2.4±0.6%(范围0-3.7%；N = 5)。亚治疗性WP1066和节律性CTX治疗小鼠为2.0±0.4%(范围1.4-2.7%；N = 4)和1.7±0.7%(范围0.8-3%；n =5) p-STAT3表达。在肺肿瘤模型中，除了p-STAT3已经处于低水平之外，WP1066的加入并未对CTX在调节p-STAT3抑制方面提供任何进一步的加性作用（图5B）。虽然在节律CTX治疗的动物中，肿瘤中p-STAT3的表达在脑和肺之间存在显著差异，但由于肺肿瘤发病率低（即细胞毒性CTX在肺中的疗效显著），细胞毒性CTX组中p-STAT3水平的测定不能用于提供二次验证。两组间肿瘤微环境中肿瘤浸润的巨噬细胞/小胶质细胞和CD8 T细胞数量无显著性差异（数据未显示）。

生长抑制试验。[1]
3,[4,5-二甲基噻唑-2-基]-5-[3-羧基甲氧基苯基]-2-[4-巯基]- 2h -四氮唑（MTT）检测采用基于MTT的细胞增殖/细胞毒性检测系统。简单地说，在含有10% FCS的RPMI 1640中洗涤新鲜的低密度外周血细胞和处于对数生长期的各种细胞系两次，并在血细胞计中计数。采用台盼蓝（0.1%）染色法测定细胞活力。在100 μL RPMI 1640培养液中分别添加10% FCS或添加WP1066培养液，培养等量活细胞（5 × 104个/孔）；96孔平板，37°C， 5% CO2加湿，持续孵育72小时。每种条件下的实验都做了三次。孵育后，每孔加入20 μL CellTiter96 One Solution Reagent。然后在加湿的5% CO2气氛中，在37°C下再孵育60分钟。孵育后，立即使用96孔板阅读器在490 nm波长下读取吸光度。

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膜联蛋白V和碘化丙啶染色。[1]
用v处理24、48和72 h后，用PBS洗涤细胞，用100 μL的结合缓冲液[10 mmol/L 4-（2-羟乙基）-1-哌嗪乙烷磺酸（pH 7.4）， 0.15 mol/L NaCl, 5 mmol/L KCl， 1 mmol/L MgCl2和1.8 mmol/L CaCl2]重悬，其中加入Annexin v -氟异硫氰酸酯。细胞在室温下黑暗孵育15分钟。孵育后，洗涤细胞，再用0.2 mL结合缓冲液重悬。

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线粒体跨膜电位测定。[1]
在WP1066处理72小时后，用亚微摩尔浓度的MitoTracker探针孵育细胞，以评估线粒体膜电位的变化。MitoTracker探针被动地扩散穿过质膜并积聚在线粒体中。细胞用MitoTracker Red CMXRos和MTGreen FM染色。简单地说，细胞在无Ca2+的PBS中洗涤，用MitoTracker染料染色，在37°C的黑暗中孵育1小时。CMXRos和MTGreen通过线粒体膜电位的作用进入线粒体，并与硫醇残基反应形成共价硫醇酯键。

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细胞周期分析。[3]
按标准方案进行细胞周期分析。简单地说，在WP1066孵育后，5 × 106个细胞成球。细胞微球洗涤后用2ml 1%多聚甲醛PBS重悬。在4°C条件下，用或不加WP1066孵育细胞15分钟，然后用PBS洗涤，用2ml无水乙醇重悬，在- 20°C条件下保存，直到需要染色。将保存的细胞在PBS中洗涤2次，重悬于0.5 mL碘化丙啶染色缓冲液中（50 μg/mL碘化丙啶和10 μg/mL RNase在PBS中），室温下全黑暗孵育1 h。流式细胞术分析使用FACSCalibur流式细胞仪和CellQuest软件程序。使用CellQuest和ModFit LT软件程序进行数据分析。

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Annexin V法检测细胞凋亡。[3]
如前所述，采用annexin V-FITC测定法 定量细胞凋亡。简单地说，WP1066处理的OCIM2和K562细胞用冷PBS洗涤两次，然后在结合缓冲液[10 nmol/L N-（2-羟乙基哌嗪）-N ' -2-乙磺酸，140 nmol/L NaCl和5 nmol/L CaCl2 (pH, 7.4)]中重悬，浓度为1 × 106个细胞/mL。孵育后，各取100 μL转入5 ml培养管中，加入5 μL膜联蛋白V-FITC。将试管轻轻旋转，在室温下完全黑暗中孵育15分钟。在孵育结束时，每个试管中加入400 mL结合缓冲液，并立即使用FACSCalibur流式细胞仪和CellQuest软件进行流式细胞术分析细胞。使用CellQuest和ModFit LT（2.0）软件程序进行数据分析。为了确定WP1066-诱导的凋亡是否依赖于caspase，将OCIM2细胞与20 μL泛caspase抑制剂Z-VAD-FMK预孵育，并采用上述annexin V法检测凋亡细胞。

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细胞存活试验[2]
将B16细胞以每孔2000个细胞的密度接种于96孔培养板中，在0、0.156、0.313、0.625、1.25、2.5和5.0µM的浓度下用WP1066处理，或在CTX浓度为0、0.156 mg/ml （0.559 mM）、0.313 mg/ml （1.121 mM）、0.625mg/ml （2.239 mM）和1.25 mg/ml （4.478 mM）的浓度下处理。WP1066稀释剂DMSO在终浓度为0.05%时使用，包括与CTX作为对照。处理72 h后，每孔加入25µl 5 mg/ml二甲基噻唑基二苯基四氮唑盐溶液，在5% CO2和95%空气的37℃湿化气氛中培养3 h。用100µl/孔裂解缓冲液（50%二甲基甲酰胺，20%十二烷基硫酸钠[SDS]， pH 5.6）裂解细胞，室温孵育过夜。在570 nm处读取od值评估细胞活力，计算IC50。

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免疫印迹分析[2]
将B16细胞以2 × 106个/孔的密度接种于6孔培养板中，在含5% CO2的环境中，37℃RPMI培养基中孵育过夜。之后，将B16细胞分别在WP1066（2.5µM、5µM）、CTX [0.75 mg/ml（低于IC50）、1.5 mg/ml（高于IC50）]、或2.5µM WP1066与CTX （0.75 mg/ml、1.5 mg/ml）联合培养2小时。之后，将B16细胞制成颗粒，用1500 rpm的冷冻PBS冲洗5分钟，然后在含有1% Triton-X-100加磷酸酶和蛋白酶抑制剂 的冷冻裂解缓冲液（50 mM Tris-HCl [pH 8.0], 150 mM NaCl, 1 mM EDTA）中放置30分钟。裂解液在4℃下14000 rpm离心10分钟，收集上清液并定量其蛋白质含量。等量的蛋白质（65µg）在含有SDS的8%聚丙烯酰胺凝胶中电泳分离，转移到硝化纤维素膜上，用针对p-STAT3 （Tyr705）、STAT3和β-actin的特异性抗体进行免疫印迹分析。

在脑内模型中，CTX 的节律性给药方式为口服，剂量为 20 mg/kg，每日一次（周末停药），直至安乐死/死亡或最多持续 3 周（以先到者为准）；在肺内模型中，CTX 的给药方式为腹腔注射，脑内模型中采用两周一次的周期给药，周期之间间隔 1 周；肺内模型中采用一个周期给药。每个疗程包括每隔一天给予三次CTX（每次150 mg/kg）（总剂量450 mg/kg，最大耐受剂量）¹⁶。由于超过80%的脑内B16黑色素瘤小鼠在接受40 mg/kg WP1066治疗后可长期存活²⁰，因此使用30 mg/kg的亚治疗剂量WP1066，以确定其与CTX的叠加/协同作用。WP1066以DMSO/聚乙二醇(PEG) 300（1:4比例）为溶剂，经口给药，每隔一天给药一次，共9次（周一、周三和周五）。阴性对照组仅使用DMSO/PEG 300溶剂。 [2]

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体内免疫细胞抑制的测定[2]
为了确定脾脏和外周血中免疫细胞群的抑制情况，如上所述，用CTX、WP1066或CTX联合WP1066治疗荷瘤小鼠14天。从小鼠脾脏和外周血中制备单细胞悬液，并用FITC标记的抗CD4抗体（L3T4）或PE标记的抗CD8抗体（53-6.7）进行表面染色，再用APC标记的FoxP3进行胞内染色。根据相应标记物的阳性表面染色，计算外周血中CD4⁺和CD8⁺ T细胞的数量，并计算其占外周血单核细胞（PBMC）总数的比例。如前所述，计算外周血和CD4⁺ Treg细胞群中FoxP3⁺ Treg细胞的百分比。

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溶于 DMSO:聚乙二醇 300 (20:80)；40 mg/kg;口服灌胃

Caki-1 异种移植小鼠

[1]. WP1066, a novel JAK2 inhibitor, suppresses proliferation and induces apoptosis in erythroid human cells carrying the JAK2 V617F mutation. Clin Cancer Res, 2008, (3), 788-796.

[2]. The tumor microenvironment expression of p-STAT3 influences the efficacy of WP1066 in murine melanoma models. Int J Cancer, 2012, 131(1), 8-17.

[3]. WP1066 disrupts Janus kinase-2 and induces caspase-dependent apoptosis in acute myelogenous leukemia cells. Cancer Res, 2007, 67(23), 11291-11299.

WP1066 已用于黑色素瘤、脑癌、实体瘤和中枢神经系统肿瘤的治疗研究。
STAT3 抑制剂 WP1066 是一种口服生物利用度高的小分子信号转导和激活因子 3 (STAT3) 抑制剂，具有潜在的抗肿瘤和免疫调节活性。给药后，STAT3 抑制剂 WP1066 可阻断 p-STAT 的核内转位，从而抑制 STAT3 信号传导并降低下游产物（包括 c-Myc）的水平。此外，WP1066 可能上调人小胶质细胞上的共刺激分子（包括 CD80 和 CD86），并逆转胶质瘤癌干细胞 (gCSC) 介导的先天性和适应性免疫抑制，从而恢复抗肿瘤效应免疫反应。 STAT3 通路在多种癌症类型中过度活跃，并与 CSC 介导的生长、复发和对传统化疗的耐药性有关。

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目的：在骨髓增生性疾病患者中发现 Janus 激酶 (JAK)-2 基因第 617 位密码子激活的体细胞突变 (JAK2 V617F)，为开发针对这些恶性肿瘤的靶向疗法开辟了新的途径。然而，目前尚无有效的JAK2抑制剂可用于临床。实验设计：我们研究了JAK2抑制剂AG490的新型类似物(E)-3-(6-溴吡啶-2-基)-2-氰基-N-(S0-1-苯基乙基)丙烯酰胺(WP1066)在JAK2 V617F阳性红白血病HEL细胞和真性红细胞增多症患者血细胞中的活性。结果：我们发现WP1066以剂量和时间依赖的方式显著抑制JAK2及其下游信号转导及转录激活因子3(STAT3)、信号转导及转录激活因子5(STAT5)和细胞外信号调节激酶1/2(ERK1/2)通路。因此，低微摩尔浓度的WP1066在HEL细胞中诱导了时间和剂量依赖性的抗增殖和促凋亡作用。正如预期，WP1066 以剂量依赖的方式抑制了携带 JAK2 V617F 突变的真性红细胞增多症患者外周血造血祖细胞的增殖。结论：我们的数据表明，WP1066 在体外和离体实验中均具有活性，应进一步开发用于治疗表达 JAK2 V617F 突变的肿瘤。[1]

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黑色素瘤是一种常见且致命的肿瘤，一旦转移至中枢神经系统 (CNS)，患者的中位生存期通常不足 5 个月。信号转导和转录激活因子 3 (STAT3) 的激活已被确定为驱动黑色素瘤基本成分的关键介质。我们假设，作为一种新型 STAT3 信号通路抑制剂，WP1066 可以增强环磷酰胺 (CTX) 对黑色素瘤（包括中枢神经系统内的黑色素瘤）的抗肿瘤活性。本研究通过肿瘤和免疫介导的细胞毒性试验、体内评估调节性T细胞（Tregs）减少情况以及免疫组织化学法测定肿瘤内p-STAT3表达，探讨了其疗效机制。在同源小鼠系统性和脑内黑色素瘤模型中，研究了WP1066联合节律性给药和细胞毒性给药的环磷酰胺（CTX）的治疗效果。结果显示，WP1066对p-STAT3的抑制作用可随CTX剂量的增加而增强。然而，在脑内黑色素瘤小鼠中，接受细胞毒性CTX联合WP1066治疗的小鼠疗效最佳，其中位生存期为120天，延长了375%，长期生存率为57%。该治疗效果与肿瘤微环境中p-STAT3的表达水平相关。 CTX与WP1066联合使用可发挥细胞毒性作用，其疗效归因于这些药物对肿瘤的直接细胞毒性作用，并具有治疗中枢神经系统黑色素瘤的最大治疗潜力。[2] 多种刺激急性髓系白血病（AML）细胞增殖的细胞因子和生长因子通过激活转录因子Janus激酶2（JAK2）传递信号。因此，抑制JAK2或其下游信号通路可抑制AML细胞的增殖。由于(E)-3-(6-溴吡啶-2-基)-2-氰基-N-((S0-1-苯乙基)丙烯酰胺) (WP1066)是JAK2抑制剂AG490的新型类似物，我们测试了其在AML细胞中的活性并研究了其作用机制。利用克隆形成实验，我们发现WP1066虽然对正常骨髓祖细胞的影响甚微，但却能抑制新诊断急性髓系白血病（AML）患者来源的AML集落形成细胞以及AML细胞系OCIM2和K562的增殖。WP1066通过诱导细胞在细胞周期的G0-G1期积累来抑制OCIM2细胞的增殖。与母体化合物AG490类似，WP1066抑制JAK2的磷酸化，但与AG490不同的是，WP1066还能降解JAK2蛋白，从而阻断其下游的信号转导和转录激活因子（STAT）以及磷脂酰肌醇-3-激酶（PI3K）通路。这些作用最终导致caspase通路的激活。将 OCIM2 和 K562 细胞与 WP1066 孵育后，均可激活 caspase-3，诱导聚（ADP-核糖）聚合酶的裂解，并导致 caspase 依赖性细胞凋亡。因此，WP1066 是一种有效的 JAK2 抑制剂，其在 AML 和其他血液系统恶性肿瘤中的作用值得进一步研究。[3]

C17H14BRN3O

356.22

355.032

C, 57.32; H, 3.96; Br, 22.43; N, 11.80; O, 4.49

857064-38-1

11210478

Off-white to light yellow solid powder

1.4±0.1 g/cm3

569.9±50.0 °C at 760 mmHg

298.5±30.1 °C

0.0±1.6 mmHg at 25°C

1.637

2.95

65.78

1

3

4

22

462

1

C[C@@H](C1=CC=CC=C1)NC(=O)/C(=C/C2=NC(=CC=C2)Br)/C#N

VFUAJMPDXIRPKO-LQELWAHVSA-N

InChI=1S/C17H14BrN3O/c1-12(13-6-3-2-4-7-13)20-17(22)14(11-19)10-15-8-5-9-16(18)21-15/h2-10,12H,1H3,(H,20,22)/b14-10+/t12-/m0/s1

(S,E)-3-(6-bromopyridin-2-yl)-2-cyano-N-(1-phenylethyl)acrylamide

WP-1066; WP 1066; WP1066; (S,E)-3-(6-Bromopyridin-2-yl)-2-cyano-N-(1-phenylethyl)acrylamide; (E)-3-(6-bromopyridin-2-yl)-2-cyano-N-[(1S)-1-phenylethyl]prop-2-enamide; UNII-63V8AIE65T; DTXSID50235007; ...; 857064-38-1; WP1066

2934.99.9001

Powder      -20°C    3 years

                     4°C     2 years

In solvent   -80°C    6 months

                  -20°C    1 month

Room temperature (This product is stable at ambient temperature for a few days during ordinary shipping and time spent in Customs)

注意: 如下所列的是一些常用的体内动物实验溶解配方，主要用于溶解难溶或不溶于水的产品（水溶度<1 mg/mL）。 建议您先取少量样品进行尝试，如该配方可行，再根据实验需求增加样品量。

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注射用配方1: DMSO : Tween 80： Saline = 10 : 5 : 85 (如： 100 μL DMSO → 50 μL Tween 80 → 850 μL Saline)
*生理盐水/Saline的制备：将0.9g氯化钠/NaCl溶解在100 mL ddH ₂ O中，得到澄清溶液。
注射用配方 2: DMSO : PEG300 ：Tween 80 : Saline = 10 : 40 : 5 : 45 (如： 100 μL DMSO → 400 μL PEG300 → 50 μL Tween 80 → 450 μL Saline)
注射用配方 3: DMSO : Corn oil = 10 : 90 (如： 100 μL DMSO → 900 μL Corn oil)
示例: 以注射用配方 3 (DMSO : Corn oil = 10 : 90) 为例说明, 如果要配制 1 mL 2.5 mg/mL的工作液, 您可以取 100 μL 25 mg/mL 澄清的 DMSO 储备液，加到 900 μL Corn oil/玉米油中, 混合均匀。

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注射用配方 4: DMSO : 20% SBE-β-CD in Saline = 10 : 90 [如：100 μL DMSO → 900 μL (20% SBE-β-CD in Saline)]
*20% SBE-β-CD in Saline的制备（4°C，储存1周）：将2g SBE-β-CD (磺丁基-β-环糊精) 溶解于10mL生理盐水中，得到澄清溶液。
注射用配方 5: 2-Hydroxypropyl-β-cyclodextrin : Saline = 50 : 50 (如： 500 μL 2-Hydroxypropyl-β-cyclodextrin (羟丙基环胡精)→ 500 μL Saline)
注射用配方 6: DMSO : PEG300 : Castor oil : Saline = 5 : 10 : 20 : 65 (如： 50 μL DMSO → 100 μL PEG300 → 200 μL Castor oil → 650 μL Saline)
注射用配方 7: Ethanol : Cremophor : Saline = 10： 10 : 80 (如： 100 μL Ethanol → 100 μL Cremophor → 800 μL Saline)
注射用配方 8: 溶解于Cremophor/Ethanol (50 : 50), 然后用生理盐水稀释。
注射用配方 9: EtOH : Corn oil = 10 : 90 (如： 100 μL EtOH → 900 μL Corn oil)
注射用配方 10: EtOH : PEG300：Tween 80 : Saline = 10 : 40 : 5 : 45 (如： 100 μL EtOH → 400 μL PEG300 → 50 μL Tween 80 → 450 μL Saline)

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口服配方 1: 悬浮于0.5% CMC Na (羧甲基纤维素钠)
口服配方 2: 悬浮于0.5% Carboxymethyl cellulose (羧甲基纤维素)
示例: 以口服配方 1 (悬浮于 0.5% CMC Na)为例说明, 如果要配制 100 mL 2.5 mg/mL 的工作液, 您可以先取0.5g CMC Na并将其溶解于100mL ddH2O中，得到0.5%CMC-Na澄清溶液；然后将250 mg待测化合物加到100 mL前述 0.5%CMC Na溶液中，得到悬浮液。

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口服配方 3: 溶解于 PEG400 (聚乙二醇400)
口服配方 4: 悬浮于0.2% Carboxymethyl cellulose (羧甲基纤维素)
口服配方 5: 溶解于0.25% Tween 80 and 0.5% Carboxymethyl cellulose (羧甲基纤维素)
口服配方 6: 做成粉末与食物混合

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注意: 以上为较为常见方法，仅供参考， InvivoChem并未独立验证这些配方的准确性。具体溶剂的选择首先应参照文献已报道溶解方法、配方或剂型，对于某些尚未有文献报道溶解方法的化合物，需通过前期实验来确定（建议先取少量样品进行尝试），包括产品的溶解情况、梯度设置、动物的耐受性等。

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请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解配方/方案：
1、请先配制澄清的储备液(如：用DMSO配置50 或 100 mg/mL母液(储备液));
2、取适量母液，按从左到右的顺序依次添加助溶剂，澄清后再加入下一助溶剂。以 下列配方为例说明 (注意此配方只用于说明，并不一定代表此产品 的实际溶解配方):
10% DMSO → 40% PEG300 → 5% Tween-80 → 45% ddH2O (或 saline);
假设最终工作液的体积为 1 mL, 浓度为5 mg/mL: 取 100 μL 50 mg/mL 的澄清 DMSO 储备液加到 400 μL PEG300 中，混合均匀/澄清；向上述体系中加入50 μL Tween-80，混合均匀/澄清；然后继续加入450 μL ddH2O (或 saline)定容至 1 mL；
3、溶剂前显示的百分比是指该溶剂在最终溶液/工作液中的体积所占比例;
4、 如产品在配制过程中出现沉淀/析出，可通过加热(≤50℃)或超声的方式助溶;
5、为保证最佳实验结果，工作液请现配现用！
6、如不确定怎么将母液配置成体内动物实验的工作液，请查看说明书或联系我们;
7、 以上所有助溶剂都可在 Invivochem.cn网站购买。